[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما :: ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو نشریه و مقاله ها::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات وبگاه::
بایگانی مقاله های زیر چاپ::
وبگاه های نمایه کننده::
اسامی داوران::
مبانی اخلاقی نشریه::
آمار سایت::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
شماره شاپا
۲۶۷۶۵۹۹۳
..
ناشر
انجمن گل و گیاهان زینتی ایران
پژوهشکده گل و گیاهان زینتی
..
پیوندهای مفید

انجمن گل و گیاهان زینتی ایران

پژوهشکده ملی گل و گیاهان زینتی
..
آمارهای سایت
..
:: دوره 7، شماره 2 - ( پاییز و زمستان 1401 ) ::
جلد 7 شماره 2 صفحات 348-329 برگشت به فهرست نسخه ها
مقایسه تاثیرهای فیزیولوژیک قارچ تریکودرما (والد و جهش یافته) علیهFusarium oxysporum f.sp. dianthi در میخک ‘White Liberty’
سمیرا شهبازی* ، راضیه سرآبادانی ، شیما حیدرپور ، حامد عسکری
سازمان انرژی اتمی
چکیده:   (1520 مشاهده)
میخک از گیاهان زینتی مهم است و Fusarium oxysporum f.sp. dianthi عامل پژمردگی فوزاریومی، خسارت فراوانی را به پرورش‌دهندگان میخک وارد می‌سازد. هدف از پژوهش کنونی بررسی واکنش گیاه میخک آلوده به قارچ Fusarium oxysporum f.sp. dianthi و مایه‌زنی شده با قارچ تریکودرما (والد و جهش یافته) در برخی از شاخص‌های فیزیولوژیک و آنزیمی مرتبط با بروز مقاومت به بیمارگر بود. پس از جداسازی و خالص‌سازی عامل بیماری‌زا و تایید بیماری‌زایی آن­ها، جدایه F. oxysporum N112 به عنوان سویه پرآزار بیمارگر انتخاب شد. جدایه‌های تریکودرما )والد و جهش‌یافته( از کلکسیون پژوهشکده کشاورزی هسته‌ای دریافت و قدرت جلوگیری از رشد F. oxysporum N112 در شرایط درون شیشه‌ای بررسی شد. میزان کاهش بروز بیماری در اثر تیمار با تریکودرمای منتخب روی گیاه میخک ‘White Liberty’ در گلخانه بررسی شد. میزان پروتئین، سبزینه a وb، کارتنوئید و فعالیت آنزیم‌های پراکسیداز و پلی‌فنول‌ اکسیداز در نمونه­های برگی در روزهای 7، 14 و 21 اندازه گیری شد. نتایج این پژوهش نشان از کاهش تولید پروتئین، سبزینه a و b، کاروتنوئید در گیاهان آلوده و افزایش آنزیم‌های پراکسیداز و پلی‌فنول‌ اکسیداز در اثر تجمع رادیکال‌های آزاد در بافت برگی داشت. در حالی­که مایه زنی با تریکودرما منجر به افزایش محتوی پروتئین، سبزینه a و b و کاروتنوئید در برگ و جلوگیری از انباشت رادیکال های آزاد و در نتیجه کاهش تجمع آنزیم‌های پراکسیداز و پلی‌فنول‌ اکسیداز در گیاه میخک آلوده به قارچ Fusarium oxysporum f.sp. dianthi شد. افزون بر این، در گیاهان تیمار شده با تریکودرمای جهش‌یافته افزایش انباشت سبزینه و پروتئین در برگ و کاهش بروز بیماری درمقایسه با جدایه تریکودرما (والد) دیده شد. از سوی دیگر، تیمار با تریکودرمای جهش‌یافته بیش از جدایه والد در پیشگیری از پیشرفت بیماری، 21 روز پس از مایه زنی با بیمارگر تاثیر داشت که ممکن است به دلیل تاثیر تیمار با تریکودرمای جهش‌یافته در کاهش اکسایش یاخته‌ای در گیاه بیمار باشد. در مجموع، نتایج نشان داد که، تریکودرمای جهش یافته افزون بر قدرت نا­هم­افزایی (آنتاگونیستی) بالاتر از والد، از راه تاثیر بیشتر در تعادل اکسایش یاخته‌ای می‌تواند عامل کنترل زیستی موثرتری در برنامه تلفیقی مبارزه با عامل پژمردگی فوزاریومی میخک باشد.

واژه‌های کلیدی: ianthus caryophyllus، Fusarium oxysporum، تریکودرما، کنترل زیستی، پرتوتابی با پرتو گاما
متن کامل [PDF 897 kb]   (212 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تخصصي
دریافت: 1400/7/6 | پذیرش: 1401/10/17 | انتشار: 1402/2/13
فهرست منابع
1. رفرنس های متنی مثل خروجی کراس رف را در اینجا وارد کرده و تایید کنید -------------Bradford, M.M., )1976(. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72, 248-254. [DOI:10.1006/abio.1976.9999]
2. Daguerre, Y., Siegel, K., Edel-Hermann, V., Steinberg, C., )2014(. Fungal proteins and genes associated with biocontrol mechanisms of soil-borne pathogens: a review. Fungal Biology Reviews, 28, 97-125. [DOI:10.1016/j.fbr.2014.11.001]
3. De Gara, L., de Pinto, M.C., Tommasi, F., )2003(. The antioxidant systems vis-à-vis reactive oxygen species during plant-pathogen interaction. Plant Physiology and Biochemistry 41, 863-870. [DOI:10.1016/S0981-9428(03)00135-9]
4. Dean, R., Van Kan, J.A., Pretorius, Z.A., Hammond‐Kosack, K.E., Di Pietro, A., Spanu, P.D., Rudd, J.J., Dickman, M., Kahmann, R., Ellis, J., )2012(. The Top 10 fungal pathogens in molecular plant pathology. Molecular Plant Pathology, 13, 414-430. [DOI:10.1111/j.1364-3703.2011.00783.x]
5. Dogan, S., Dogan, M., )2004(. Determination of kinetic properties of polyphenol oxidase from Thymus (Thymus longicaulis subsp. chaubardii var. chaubardii). Food Chemistry, 88, 69-77. [DOI:10.1016/j.foodchem.2003.12.025]
6. Garavaglia, B.S., Thomas, L., Gottig, N., Dunger, G., Garofalo, C.G., Daurelio, L.D., Ndimba, B., Orellano, E.G., Gehring, C., Ottado, J., )2010(. A eukaryotic-acquired gene by a biotrophic phytopathogen allows prolonged survival on the host by counteracting the shut-down of plant photosynthesis. PLoS One, 5, 8950. [DOI:10.1371/journal.pone.0008950]
7. Gullino, M.L., Daughtrey, M.L., Garibaldi, A., Elmer, W.H., )2015(. Fusarium wilts of ornamental crops and their management. Crop Protection, 73, 50-59. [DOI:10.1016/j.cropro.2015.01.003]
8. Gupta, V., Misra, A., )2009(. Efficacy of bioagents against Fusarium wilt of guava. Journal of Mycology and Plant Pathology, 39, 101.
9. Howell, C.R., )2006(. Understanding the mechanisms employed by Trichoderma virens to effect biological control of cotton diseases. Phytopathology, 96, 178-180. [DOI:10.1094/PHYTO-96-0178]
10. John, R.P., Tyagi, R.D., Prévost, D., Brar, S.K., Pouleur, S., Surampalli, R.Y., )2010(. Mycoparasitic Trichoderma viride as a biocontrol agent against Fusarium oxysporum f. sp. adzuki and Pythium arrhenomanes and as a growth promoter of soybean. Crop Protection, 29, 1452-1459. [DOI:10.1016/j.cropro.2010.08.004]
11. Karimi, A., Rouhani H., Zafari, D., Khodakaramian G. and Taghinasab M., )2007). Biological control of carnation vascular wilt disease with Fusarium oxysporum f. sp. dianthii by strains of Bacillus and Pseudomonas isolated from rhizosphere, Journal of Agricultural Science and Technology and Natural Resources, 11(41b), 309-319.
12. Khan, R.A., Najeeb, S., Hussain, S., Xie, B., Li, Y., (2020). Bioactive Secondary Metabolites from Trichoderma spp. against Phytopathogenic Fungi. Microorganisms, , 8(6), 817. [DOI:10.3390/microorganisms8060817]
13. Lavania, M., Chauhan, P.S., Chauhan, S.V.S., Singh, H.B., Nautiyal, C.S., (2006). Induction of Plant Defense Enzymes and Phenolics by Treatment With Plant Growth-Promoting Rhizobacteria Serratia marcescens NBRI1213. Current Microbiology, 52, 363-368. [DOI:10.1007/s00284-005-5578-2]
14. Leslie, J.F., Summerell, B.A., (2008). The Fusarium laboratory manual. In: John Wiley & Sons(ed.) Media recipis and preparatin. First Edition. Wiley, New York, pp 5-11.
15. Lori, G., Edel-Hermann, V., Gautheron, N. and Alabouvette, C., (2004). Genetic diversity of pathogenic and nonpathogenic populations of Fusarium oxysporum isolated from carnation fields in Argentina. Phytopathology, 94(6), 661-668. [DOI:10.1094/PHYTO.2004.94.6.661]
16. Lu, S., Su, W., Li, H., Guo, Z., (2009). Abscisic acid improves drought tolerance of triploid bermudagrass and involves H2O2- and NO-induced antioxidant enzyme activities. Plant Physiology and Biochemistry, 47, 132-138. [DOI:10.1016/j.plaphy.2008.10.006]
17. Mika, A., Luthje, S., (2003). Properties of guaiacol peroxidase activities isolated from corn root plasma membranes. Plant Physiology, 132, 1489-1498. [DOI:10.1104/pp.103.020396]
18. Nicolopoulou-Stamati, P., Maipas, S., Kotampasi, C., Stamatis, P., Hens, L., (2016). Chemical pesticides and human health: the urgent need for a new concept in agriculture. Frontiers in Public Health, 4, 148. [DOI:10.3389/fpubh.2016.00148]
19. Nikam, P., Jagtap, G., Sontakke, P., (2007). Management of chickpea wilt caused byFusarium oxysporium f. sp. ciceri. African Journal of Agricultural Research, 2, 692-697.
20. Pratibha, S., (2000). An integrated approach for the management of carnation wilt caused by Fusarium oxysporum f. sp. dianthi (Pril. and Del.) Snyd. and Hans. New Botanist, 27, 143-150.
21. Rana, A., Sahgal, M., Johri, B.N., (2017). Fusarium oxysporum: Genomics, Diversity and Plant-Host Interaction, in: Satyanarayana, T., Deshmukh, S.K., Johri, B.N. (Eds.), Developments in Fungal Biology and Applied Mycology. Springer Singapore, Singapore, pp. 159-199. [DOI:10.1007/978-981-10-4768-8_10]
22. Rini, C., Sulochana, K., (2008). Usefulness of Trichoderma and Pseudomonas against Rhizoctonia solani and Fusarium oxysporum infecting tomato. Journal of Tropical Agriculture, 45, 21-28.
23. Ros, M., Pascual, J., (2011). Mycoparasitism-related genes expression of Trichoderma harzianum isolates to evaluate their efficacy as biological control agent. Biological Control, 56(1), 59-66.‌ [DOI:10.1016/j.biocontrol.2010.10.003]
24. Santos-Rodríguez, J., Coy-Barrera, E., Ardila, H.D., (2021). Mycelium dispersion from Fusarium oxysporum f. sp. dianthi elicits a reduction of wilt severity and influences phenolic profiles of carnation (Dianthus caryophyllus L.) roots. Plants, 10, 1447. [DOI:10.3390/plants10071447]
25. Soufi, E., Safaie, N., Shahbazi, S., Mojerlou, S., (2021). Gamma irradiation induces genetic variation and boosting antagonism in Trichoderma aureoviride. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 54(19-20), 1649-1674.‌ [DOI:10.1080/03235408.2021.1936377]
26. Sundaramoorthy, S., Balabaskar, P., (2013). Biocontrol efficacy of Trichoderma spp. against wilt of tomato caused by Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici. Journal of Applied Biology & Biotechnology, 1, 36-40.
27. Shahbazi, S., Zaker Tavallaie, F., Daroodi, Z., (2021). Morphological and molecular identification of Fusarium spp. associated with carnation Dianthus caryophyllus in Mahallat, Iran. Journal of Crop Protection, 10(3), 461-471.
28. Younesi, P., Raushit, A. M., Etebarian H. R., (2013). The mutual effect of plant nutrition and Fusarium wilt disease of cucumber caused by Fusarium oxysporum f. sp. cucumerinum, New Research in Plant Pathology, 6(3), 297-308 (In persian).
29. Zaker Tavallaie, F., Shahbazi, S., Daroodi, Z. (2022). Effective biological control of carnation Fusarium wilt using a new combination of Trichoderma mutant isolates. Journal of Agricultural Science and Technology, 24(6), 1501-12517.‌ [DOI:10.52547/jast.24.6.1501]
30. Bradford, M.M., )1976(. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72, 248-254. [DOI:10.1006/abio.1976.9999]
31. Daguerre, Y., Siegel, K., Edel-Hermann, V., Steinberg, C., )2014(. Fungal proteins and genes associated with biocontrol mechanisms of soil-borne pathogens: a review. Fungal Biology Reviews, 28, 97-125. [DOI:10.1016/j.fbr.2014.11.001]
32. De Gara, L., de Pinto, M.C., Tommasi, F., )2003(. The antioxidant systems vis-à-vis reactive oxygen species during plant-pathogen interaction. Plant Physiology and Biochemistry 41, 863-870. [DOI:10.1016/S0981-9428(03)00135-9]
33. Dean, R., Van Kan, J.A., Pretorius, Z.A., Hammond‐Kosack, K.E., Di Pietro, A., Spanu, P.D., Rudd, J.J., Dickman, M., Kahmann, R., Ellis, J., )2012(. The Top 10 fungal pathogens in molecular plant pathology. Molecular Plant Pathology, 13, 414-430. [DOI:10.1111/j.1364-3703.2011.00783.x]
34. Dogan, S., Dogan, M., )2004(. Determination of kinetic properties of polyphenol oxidase from Thymus (Thymus longicaulis subsp. chaubardii var. chaubardii). Food Chemistry, 88, 69-77. [DOI:10.1016/j.foodchem.2003.12.025]
35. Garavaglia, B.S., Thomas, L., Gottig, N., Dunger, G., Garofalo, C.G., Daurelio, L.D., Ndimba, B., Orellano, E.G., Gehring, C., Ottado, J., )2010(. A eukaryotic-acquired gene by a biotrophic phytopathogen allows prolonged survival on the host by counteracting the shut-down of plant photosynthesis. PLoS One, 5, 8950. [DOI:10.1371/journal.pone.0008950]
36. Gullino, M.L., Daughtrey, M.L., Garibaldi, A., Elmer, W.H., )2015(. Fusarium wilts of ornamental crops and their management. Crop Protection, 73, 50-59. [DOI:10.1016/j.cropro.2015.01.003]
37. Gupta, V., Misra, A., )2009(. Efficacy of bioagents against Fusarium wilt of guava. Journal of Mycology and Plant Pathology, 39, 101.
38. Howell, C.R., )2006(. Understanding the mechanisms employed by Trichoderma virens to effect biological control of cotton diseases. Phytopathology, 96, 178-180. [DOI:10.1094/PHYTO-96-0178]
39. John, R.P., Tyagi, R.D., Prévost, D., Brar, S.K., Pouleur, S., Surampalli, R.Y., )2010(. Mycoparasitic Trichoderma viride as a biocontrol agent against Fusarium oxysporum f. sp. adzuki and Pythium arrhenomanes and as a growth promoter of soybean. Crop Protection, 29, 1452-1459. [DOI:10.1016/j.cropro.2010.08.004]
40. Karimi, A., Rouhani H., Zafari, D., Khodakaramian G. and Taghinasab M., )2007). Biological control of carnation vascular wilt disease with Fusarium oxysporum f. sp. dianthii by strains of Bacillus and Pseudomonas isolated from rhizosphere, Journal of Agricultural Science and Technology and Natural Resources, 11(41b), 309-319.
41. Khan, R.A., Najeeb, S., Hussain, S., Xie, B., Li, Y., (2020). Bioactive Secondary Metabolites from Trichoderma spp. against Phytopathogenic Fungi. Microorganisms, , 8(6), 817. [DOI:10.3390/microorganisms8060817]
42. Lavania, M., Chauhan, P.S., Chauhan, S.V.S., Singh, H.B., Nautiyal, C.S., (2006). Induction of Plant Defense Enzymes and Phenolics by Treatment With Plant Growth-Promoting Rhizobacteria Serratia marcescens NBRI1213. Current Microbiology, 52, 363-368. [DOI:10.1007/s00284-005-5578-2]
43. Leslie, J.F., Summerell, B.A., (2008). The Fusarium laboratory manual. In: John Wiley & Sons(ed.) Media recipis and preparatin. First Edition. Wiley, New York, pp 5-11.
44. Lori, G., Edel-Hermann, V., Gautheron, N. and Alabouvette, C., (2004). Genetic diversity of pathogenic and nonpathogenic populations of Fusarium oxysporum isolated from carnation fields in Argentina. Phytopathology, 94(6), 661-668. [DOI:10.1094/PHYTO.2004.94.6.661]
45. Lu, S., Su, W., Li, H., Guo, Z., (2009). Abscisic acid improves drought tolerance of triploid bermudagrass and involves H2O2- and NO-induced antioxidant enzyme activities. Plant Physiology and Biochemistry, 47, 132-138. [DOI:10.1016/j.plaphy.2008.10.006]
46. Mika, A., Luthje, S., (2003). Properties of guaiacol peroxidase activities isolated from corn root plasma membranes. Plant Physiology, 132, 1489-1498. [DOI:10.1104/pp.103.020396]
47. Nicolopoulou-Stamati, P., Maipas, S., Kotampasi, C., Stamatis, P., Hens, L., (2016). Chemical pesticides and human health: the urgent need for a new concept in agriculture. Frontiers in Public Health, 4, 148. [DOI:10.3389/fpubh.2016.00148]
48. Nikam, P., Jagtap, G., Sontakke, P., (2007). Management of chickpea wilt caused byFusarium oxysporium f. sp. ciceri. African Journal of Agricultural Research, 2, 692-697.
49. Pratibha, S., (2000). An integrated approach for the management of carnation wilt caused by Fusarium oxysporum f. sp. dianthi (Pril. and Del.) Snyd. and Hans. New Botanist, 27, 143-150.
50. Rana, A., Sahgal, M., Johri, B.N., (2017). Fusarium oxysporum: Genomics, Diversity and Plant-Host Interaction, in: Satyanarayana, T., Deshmukh, S.K., Johri, B.N. (Eds.), Developments in Fungal Biology and Applied Mycology. Springer Singapore, Singapore, pp. 159-199. [DOI:10.1007/978-981-10-4768-8_10]
51. Rini, C., Sulochana, K., (2008). Usefulness of Trichoderma and Pseudomonas against Rhizoctonia solani and Fusarium oxysporum infecting tomato. Journal of Tropical Agriculture, 45, 21-28.
52. Ros, M., Pascual, J., (2011). Mycoparasitism-related genes expression of Trichoderma harzianum isolates to evaluate their efficacy as biological control agent. Biological Control, 56(1), 59-66.‌ [DOI:10.1016/j.biocontrol.2010.10.003]
53. Santos-Rodríguez, J., Coy-Barrera, E., Ardila, H.D., (2021). Mycelium dispersion from Fusarium oxysporum f. sp. dianthi elicits a reduction of wilt severity and influences phenolic profiles of carnation (Dianthus caryophyllus L.) roots. Plants, 10, 1447. [DOI:10.3390/plants10071447]
54. Soufi, E., Safaie, N., Shahbazi, S., Mojerlou, S., (2021). Gamma irradiation induces genetic variation and boosting antagonism in Trichoderma aureoviride. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 54(19-20), 1649-1674.‌ [DOI:10.1080/03235408.2021.1936377]
55. Sundaramoorthy, S., Balabaskar, P., (2013). Biocontrol efficacy of Trichoderma spp. against wilt of tomato caused by Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici. Journal of Applied Biology & Biotechnology, 1, 36-40.
56. Shahbazi, S., Zaker Tavallaie, F., Daroodi, Z., (2021). Morphological and molecular identification of Fusarium spp. associated with carnation Dianthus caryophyllus in Mahallat, Iran. Journal of Crop Protection, 10(3), 461-471.
57. Younesi, P., Raushit, A. M., Etebarian H. R., (2013). The mutual effect of plant nutrition and Fusarium wilt disease of cucumber caused by Fusarium oxysporum f. sp. cucumerinum, New Research in Plant Pathology, 6(3), 297-308 (In persian).
58. Zaker Tavallaie, F., Shahbazi, S., Daroodi, Z. (2022). Effective biological control of carnation Fusarium wilt using a new combination of Trichoderma mutant isolates. Journal of Agricultural Science and Technology, 24(6), 1501-12517.‌ [DOI:10.52547/jast.24.6.1501]
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Sarabadani R, Heidarpour S, Askari H. Comparison of the physiological effects of wild and mutated biological agents of Trichoderma spp. against Fusarium oxysporum f.sp. dianthi in carnation ‘White Liberty’. FOP 2023; 7 (2) :329-348
URL: http://flowerjournal.ir/article-1-210-fa.html

شهبازی سمیرا، سرآبادانی راضیه، حیدرپور شیما، عسکری حامد. مقایسه تاثیرهای فیزیولوژیک قارچ تریکودرما (والد و جهش یافته) علیهFusarium oxysporum f.sp. dianthi در میخک ‘White Liberty’. گل و گیاهان زینتی. 1401; 7 (2) :329-348

URL: http://flowerjournal.ir/article-1-210-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 7، شماره 2 - ( پاییز و زمستان 1401 ) برگشت به فهرست نسخه ها
گل و گیاهان زینتی Flower and Ornamental Plants
Persian site map - English site map - Created in 0.06 seconds with 45 queries by YEKTAWEB 4645