[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما :: ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو نشریه و مقاله ها::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات وبگاه::
بایگانی مقاله های زیر چاپ::
وبگاه های نمایه کننده::
اسامی داوران::
مبانی اخلاقی نشریه::
آمار سایت::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
شماره شاپا
۲۶۷۶۵۹۹۳
..
ناشر
انجمن گل و گیاهان زینتی ایران
پژوهشکده گل و گیاهان زینتی
..
پیوندهای مفید

انجمن گل و گیاهان زینتی ایران

پژوهشکده ملی گل و گیاهان زینتی
..
آمارهای سایت
..
:: دوره 9، شماره 1 - ( بهار و تابستان 1403 ) ::
جلد 9 شماره 1 صفحات 134-119 برگشت به فهرست نسخه ها
ارزیابی اثرهای دگرآسیبی خرده چوب برخی درختان و درختچه‌های زینتی در استان خوزستان
مختار حیدری*
دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان،
چکیده:   (1620 مشاهده)
تولید کمپوست، خاکپوش یا کودهای آلی روش‌های مناسب برای استفاده از بقایای هرس هستند که در کاهش مشکلات زیست‌محیطی ناشی از تجمع بقایای هرس مؤثر هستند. چوب،  دارای اثرهای دگرآسیبی است. باتوجه‌به اینکه در مورد اثرات دگرآسیبی استفاده از چوب درختان و درختچه‌های زینتی بر رشد گیاهان، گزارش‌های محدودی منتشر گردیده است، در آزمایش حاضر، ترکیبات بیوشیمیایی و دگرآسیبی اثر خرده چوب هشت گونه درخت و درختچه زینتی بررسی شد. خرده چوب گل کاغذی (Bougainvillea)، برهان (Albbizia lebbeck)، سپستان (Cordia myxa)، کنوکارپوس (Conocarpus erectus)، ناترک (Dodonea viscosa)، خرزهره (Nerium oleander)، سوبابل (Leucaena leucocephala) و شیشه‌شور (Callistemon citrinus) به مدت ۲۴ و ۴۸ ساعت در آب خیسانده شد و عصاره آبی تهیه شد. بررسی ترکیبات بیوشیمیایی عصاره‌ها نشان داد میزان ترکیبات فنلی، شاخص تانن (A280)، فلاونوئیدها و کربوهیدرات‌های محلول غیرساختمانی و همچنین مواد جامد معلق کل و هدایت الکتریکی در عصاره آبی نمونه‌های خرده چوب تفاوت معنی‌داری داشتند ولی pH عصاره آبی نمونه‌ها تفاوت معنی‌داری نداشتند. مدت‌زمان قرارگیری خرده چوب در آب (۲۴ یا ۴۸ ساعت)، میزان هدایت الکتریکی و ترکیبات بیوشیمیایی در عصاره‌های آبی تغییر کرد. عصاره آبی سوبابل دارای بیشترین شاخص تانن ( A280/ ml67/10) و کربوهیدرات‌های محلول (mg/g 81/1) بود و بیشترین میزان فنل کل در سوبابل و کنوکارپوس بود (به ترتیب 1/107 و 55/114 mg/g). بیشترین هدایت الکتریکی در عصاره آبی سپستان (ds/m 87/2) و بیشترین مواد جامد معلق کل (06/1%) در شیشه‌شور بود. بیشترین میزان فلاونوئیدها در گل کاغذی، خرزهره، سوبابل و سپستان بود. اثر عصاره آبی تهیه‌شده از نمونه‌های خرده چوب موجب کاهش درصد تنژگی و شاخص تنژگی بذر کاهو و همچنین کاهش رشد طولی ریشه‌چه و ساقه چه کاهو شد که نشان‌دهنده وجود اثرات دگرآسیبی ترکیبات بیوشیمیایی موجود در چوب درختان و درختچه‌های زینتی بود. این نتایج می‌تواند در انتخاب این‌گونه‌ها برای طراحی کاشت فضای سبز در رابطه ‌با اثرات دگرآسیبی بقایای این گیاهان بر چمن و گیاهان زینتی مجاور و یا مدیریت پسماند هرس و تهیه کمپوست یا خاکپوش از چوب درختان و درختچه‌های زینتی مورداستفاده قرار گیرد.
واژه‌های کلیدی: اثرهای بازدارنده، ترکیبات فنلی، رشد، زیست‌سنجی، تنژگی، پسماند هرس
متن کامل [PDF 962 kb]   (427 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تخصصي
دریافت: 1403/1/6 | پذیرش: 1403/1/25 | انتشار: 1403/8/1
فهرست منابع
1. Bantle, A., Borken, W., Ellerbrock, R.H., Schulze, E.D., Weisser, W.W., Matzner, E. (2014). Quantity and quality of dissolved organic carbon released from coarse woody debris of different tree species in the early phase of decomposition. Forest Ecology and Management, 329, 287-294. [DOI:10.1016/j.foreco.2014.06.035]
2. Bres, W., Politycka, B. (2016). Contamination of Soils and Substrates in Horticulture. In: Larramendy, M.L., Soloneski, S. (Eds). Soil Contamination - Current Consequences and Further Solutions. InTech Pub. Croatia, pp. 23-41. [DOI:10.5772/64567]
3. Duryea, M.L., English, R.J., Hermansen, L.A. (1999). A comparison of landscape mulches: chemical, allelopathic, and decomposition properties. Journal of Arboriculture, 25, 88-96. [DOI:10.48044/jauf.1999.014]
4. Fazli, R., Nazarnezhad, N., Ebrahimzadeh, M. (2013). Evaluation of the antioxidant capacities and total phenolic contents of Beech, Hornbeam and Poplar Barks. Forest and Wood Products, 66(3), 339-349.
5. Gajdos, R. (1997). Effects of two composts and seven commercial cultivation media on germination and yield. Compost Science & Utilization, 5, 16-37. [DOI:10.1080/1065657X.1997.10701861]
6. Gariglio, N.F., Buyatti, M.A., Pilatti, R.A., Gonzalez Rossia, D.E., Acosta, M.R. (2002). Use of a germination bioassay to test compost maturity of willow (salix sp.) sawdust. New Zealand Journal of Crop and Horticulture Science, 30, 135-139. [DOI:10.1080/01140671.2002.9514208]
7. Haig, T. (2013). Allelochemicals in plants. In: Zeng, R. S., Mallik, A. U., Luo, S.M. (Eds). Allelopathy in Sustainable Agriculture and Forestry. New York: Springer; p. 63-104. [DOI:10.1007/978-0-387-77337-7_4]
8. Heidari, M. (2022). Evaluation of Allelopathic Effects of Wood Chips of Pomegranate, Sour Orange and Date Palm Leaves on Seed Germination of Lettuce. Journal of Research in Plant Metabolits, 1(1), 63-75. (In Persian).
9. Henschk, M., Politycka, B. (2016). Application of wood chips for soil mulching in the cultivation of ornamental grasses. Folia Horticulture, 28(2), 187-194. [DOI:10.1515/fhort-2016-0022]
10. Ismail, N.Z., Arsad, H., Samian, M.R., Hamdan, M.R. 2017. Determination of phenolic and flavonoid contents, antioxidant activities and GC-MS analysis of Clinacanthus nutans (Acanthaceae) in different locations. AGRIVITA Journal of Agricultural Science, 39(3), 335-344. [DOI:10.17503/agrivita.v39i3.1076]
11. Jabran, K., Mahajan, G., Sardana, V., Chauhan, B.S. (2015). Allelopathy for weed control in agricultural systems. Crop Protection, 15, 57-65. [DOI:10.1016/j.cropro.2015.03.004]
12. Kannepalli, S., Strom, P., F., Krogmann, U., Subroy, V, Gimenez, D., Miskewitz, R. (2016). Characterization of wood mulch and leachate/runoff from three wood recycling facilities. Journal of Environmental Management, 182, 421- 428. [DOI:10.1016/j.jenvman.2016.07.093]
13. Kazemi, F., Jozay, M. (2020). Allelopathic effects of some organic mulch extracts on seed germination and early growth of some ornamental plants. Journal of Ornamental Plants, 10(2), 99-108.
14. Komilis, D.P. and Ham, R.K. (2003). The effect of lignin and sugars to the aerobic decomposition of solid wastes. Waste Management, 23, 419-423. [DOI:10.1016/S0956-053X(03)00062-X]
15. Kunz, Ch., Sturm D.J., Varnholt, D., Walker, D. F., Gerhards, R. (2016). Allelopathic ability and weed suppressive ability of cover crops. Plant Soil Environment. 62, 60-66. [DOI:10.17221/612/2015-PSE]
16. Maimoona, A., Naeem, I., Saddiqe, Z., Ali, N., Ahmed, G., Shah, I. (2011). Analysis of total flavonoids and phenolics in different fractions of bark and needle extracts of Pinus roxburghii and Pinus wallichiana. Journal of Medicinal Plants Research, 5, 2724-2728.
17. Manalo, C., S. Nakai. (2018). Inhibitory effects of woodchips on growth of climbing bean plant Kudzu vine (Pueraria lobataOhwi). Allelopathy Journal, 45(2), 173-182. [DOI:10.26651/allelo.j./2018-45-2-1185]
18. Merwin, I.A., Hopkins, M.A., Byard, R.R. (2001). Groundcover managementinfluences nitrogen release, retention, and recycling in a New York apple orchard. Hortscience, 36(3), 451.
19. Nazari, S., Nazarnezhad, N., Ebrahimzadeh, M.A. (2013). Evaluation of antioxidant properties and total phenolic and flavonoids content of Eucalyptus camaldulensis and Pinus sylvestris bark. Iranian Journal of Wood and Paper Science Research, 28(3), 522-533.
20. Paes, J.B., Diniz, C.E.F., Lima, C.R., Bastos, P.M. Medeiros Neto, P.N. (2013). Condensed tannins of Anadenanthera colubrina var. cebil bark extracted with sodium hydroxide and sodium sulfite solutions. Revista Caatinga, 26(3), 22-27.
21. Panzella, L., Moccia, F., Toscanesi, M., Trifuoggi, M., Giovando, S., Napolitano, A. (2019). Exhausted woods from tannin extraction as an unexplored waste biomass: Evaluation of the Antioxidant and Pollutant Adsorption Properties and Activating Effects of Hydrolytic Treatments. Antioxidants, 8(84), 1-13. [DOI:10.3390/antiox8040084]
22. Rathinasabapathi, B., Ferguson, J., Gal, M. (2005). Evaluation of Allelopathic Potential of Wood Chips for Weed Suppression in Horticultural Production Systems. HortScience, 40(3), 711-713. [DOI:10.21273/HORTSCI.40.3.711]
23. Reigosa M.J., Pedrol, M. (2002). Allelopathy: from molecules to ecosystems. Science Publishers, Enfield, New Hampshire, USA, 385-389.
24. Saha, D., Marble, S.C., Pearson, B.J. (2018). Allelopathic Effects of Common Landscape and Nursery Mulch Materials on Weed Control. Frontiers in Plant Science, 9, 733. [DOI:10.3389/fpls.2018.00733]
25. Santiago, S.B., Gonçalves, F.G., Paes, J.B., Lelis, R.C.C., Vidaurre, G.B., Chaves Arantes, M.D., (2019). Condensed tannins extracted from Eucalyptus bark waste. Floresta, 49(1), 49-56. [DOI:10.5380/rf.v49i1.56141]
26. Santos, S.A., Vilela, C., Freire, C.S., Neto, C.P., Silvestre, A.J. (2013). Ultra-high performance liquid chromatography coupled to mass spectrometry applied to the identification of valuable phenolic compounds from Eucalyptus wood. Journal of Chromatography, 938, 65-74. [DOI:10.1016/j.jchromb.2013.08.034]
27. Seigler, D.S. (1996). Chemistry and mechanisms of allelopathic interactions. Agronomy Journal. 88: 876-885. [DOI:10.2134/agronj1996.00021962003600060006x]
28. Swift, M.J., Heal, O.W., Anderson, J.M. (1979). Decomposition in Terrestrial Ecosystems. University of California Press, Berkeley and Los Angeles, CA. 372 pp. [DOI:10.1525/9780520407114]
29. TMECC (Test Methods for the Examination of Composts and Composting). (2002). In: Thompson, W., Leege, P., Millner, P., Watson, M.E. (Eds.). The US Composting Council, U. S. Government Printing Office.
30. Waterhouse, A.L., (2002). Determination of Total Phenolics, in Current Protocols in Food Analytical Chemistry, I1.1.1-I1.1.8, John Wiley and Sons, Inc, Hoboken, N. J.
31. Zucconi, F., Monaco, A., Forte, M., Bertoldi, M. (1985). Phytotoxins during the stabilization of organic matter. In: Gasser, J. K. R. ed. Composting of agricultural and other wastes. London and New York, Elsevier Applied Science. pp. 73-88.
32. Bantle, A., Borken, W., Ellerbrock, R.H., Schulze, E.D., Weisser, W.W., Matzner, E. (2014). Quantity and quality of dissolved organic carbon released from coarse woody debris of different tree species in the early phase of decomposition. Forest Ecology and Management, 329, 287-294. [DOI:10.1016/j.foreco.2014.06.035]
33. Bres, W., Politycka, B. (2016). Contamination of Soils and Substrates in Horticulture. In: Larramendy, M.L., Soloneski, S. (Eds). Soil Contamination - Current Consequences and Further Solutions. InTech Pub. Croatia, pp. 23-41. [DOI:10.5772/64567]
34. Duryea, M.L., English, R.J., Hermansen, L.A. (1999). A comparison of landscape mulches: chemical, allelopathic, and decomposition properties. Journal of Arboriculture, 25, 88-96. [DOI:10.48044/jauf.1999.014]
35. Fazli, R., Nazarnezhad, N., Ebrahimzadeh, M. (2013). Evaluation of the antioxidant capacities and total phenolic contents of Beech, Hornbeam and Poplar Barks. Forest and Wood Products, 66(3), 339-349.
36. Gajdos, R. (1997). Effects of two composts and seven commercial cultivation media on germination and yield. Compost Science & Utilization, 5, 16-37. [DOI:10.1080/1065657X.1997.10701861]
37. Gariglio, N.F., Buyatti, M.A., Pilatti, R.A., Gonzalez Rossia, D.E., Acosta, M.R. (2002). Use of a germination bioassay to test compost maturity of willow (salix sp.) sawdust. New Zealand Journal of Crop and Horticulture Science, 30, 135-139. [DOI:10.1080/01140671.2002.9514208]
38. Haig, T. (2013). Allelochemicals in plants. In: Zeng, R. S., Mallik, A. U., Luo, S.M. (Eds). Allelopathy in Sustainable Agriculture and Forestry. New York: Springer; p. 63-104. [DOI:10.1007/978-0-387-77337-7_4]
39. Heidari, M. (2022). Evaluation of Allelopathic Effects of Wood Chips of Pomegranate, Sour Orange and Date Palm Leaves on Seed Germination of Lettuce. Journal of Research in Plant Metabolits, 1(1), 63-75. (In Persian).
40. Henschk, M., Politycka, B. (2016). Application of wood chips for soil mulching in the cultivation of ornamental grasses. Folia Horticulture, 28(2), 187-194. [DOI:10.1515/fhort-2016-0022]
41. Ismail, N.Z., Arsad, H., Samian, M.R., Hamdan, M.R. 2017. Determination of phenolic and flavonoid contents, antioxidant activities and GC-MS analysis of Clinacanthus nutans (Acanthaceae) in different locations. AGRIVITA Journal of Agricultural Science, 39(3), 335-344. [DOI:10.17503/agrivita.v39i3.1076]
42. Jabran, K., Mahajan, G., Sardana, V., Chauhan, B.S. (2015). Allelopathy for weed control in agricultural systems. Crop Protection, 15, 57-65. [DOI:10.1016/j.cropro.2015.03.004]
43. Kannepalli, S., Strom, P., F., Krogmann, U., Subroy, V, Gimenez, D., Miskewitz, R. (2016). Characterization of wood mulch and leachate/runoff from three wood recycling facilities. Journal of Environmental Management, 182, 421- 428. [DOI:10.1016/j.jenvman.2016.07.093]
44. Kazemi, F., Jozay, M. (2020). Allelopathic effects of some organic mulch extracts on seed germination and early growth of some ornamental plants. Journal of Ornamental Plants, 10(2), 99-108.
45. Komilis, D.P. and Ham, R.K. (2003). The effect of lignin and sugars to the aerobic decomposition of solid wastes. Waste Management, 23, 419-423. [DOI:10.1016/S0956-053X(03)00062-X]
46. Kunz, Ch., Sturm D.J., Varnholt, D., Walker, D. F., Gerhards, R. (2016). Allelopathic ability and weed suppressive ability of cover crops. Plant Soil Environment. 62, 60-66. [DOI:10.17221/612/2015-PSE]
47. Maimoona, A., Naeem, I., Saddiqe, Z., Ali, N., Ahmed, G., Shah, I. (2011). Analysis of total flavonoids and phenolics in different fractions of bark and needle extracts of Pinus roxburghii and Pinus wallichiana. Journal of Medicinal Plants Research, 5, 2724-2728.
48. Manalo, C., S. Nakai. (2018). Inhibitory effects of woodchips on growth of climbing bean plant Kudzu vine (Pueraria lobataOhwi). Allelopathy Journal, 45(2), 173-182. [DOI:10.26651/allelo.j./2018-45-2-1185]
49. Merwin, I.A., Hopkins, M.A., Byard, R.R. (2001). Groundcover managementinfluences nitrogen release, retention, and recycling in a New York apple orchard. Hortscience, 36(3), 451.
50. Nazari, S., Nazarnezhad, N., Ebrahimzadeh, M.A. (2013). Evaluation of antioxidant properties and total phenolic and flavonoids content of Eucalyptus camaldulensis and Pinus sylvestris bark. Iranian Journal of Wood and Paper Science Research, 28(3), 522-533.
51. Paes, J.B., Diniz, C.E.F., Lima, C.R., Bastos, P.M. Medeiros Neto, P.N. (2013). Condensed tannins of Anadenanthera colubrina var. cebil bark extracted with sodium hydroxide and sodium sulfite solutions. Revista Caatinga, 26(3), 22-27.
52. Panzella, L., Moccia, F., Toscanesi, M., Trifuoggi, M., Giovando, S., Napolitano, A. (2019). Exhausted woods from tannin extraction as an unexplored waste biomass: Evaluation of the Antioxidant and Pollutant Adsorption Properties and Activating Effects of Hydrolytic Treatments. Antioxidants, 8(84), 1-13. [DOI:10.3390/antiox8040084]
53. Rathinasabapathi, B., Ferguson, J., Gal, M. (2005). Evaluation of Allelopathic Potential of Wood Chips for Weed Suppression in Horticultural Production Systems. HortScience, 40(3), 711-713. [DOI:10.21273/HORTSCI.40.3.711]
54. Reigosa M.J., Pedrol, M. (2002). Allelopathy: from molecules to ecosystems. Science Publishers, Enfield, New Hampshire, USA, 385-389.
55. Saha, D., Marble, S.C., Pearson, B.J. (2018). Allelopathic Effects of Common Landscape and Nursery Mulch Materials on Weed Control. Frontiers in Plant Science, 9, 733. [DOI:10.3389/fpls.2018.00733]
56. Santiago, S.B., Gonçalves, F.G., Paes, J.B., Lelis, R.C.C., Vidaurre, G.B., Chaves Arantes, M.D., (2019). Condensed tannins extracted from Eucalyptus bark waste. Floresta, 49(1), 49-56. [DOI:10.5380/rf.v49i1.56141]
57. Santos, S.A., Vilela, C., Freire, C.S., Neto, C.P., Silvestre, A.J. (2013). Ultra-high performance liquid chromatography coupled to mass spectrometry applied to the identification of valuable phenolic compounds from Eucalyptus wood. Journal of Chromatography, 938, 65-74. [DOI:10.1016/j.jchromb.2013.08.034]
58. Seigler, D.S. (1996). Chemistry and mechanisms of allelopathic interactions. Agronomy Journal. 88: 876-885. [DOI:10.2134/agronj1996.00021962003600060006x]
59. Swift, M.J., Heal, O.W., Anderson, J.M. (1979). Decomposition in Terrestrial Ecosystems. University of California Press, Berkeley and Los Angeles, CA. 372 pp. [DOI:10.1525/9780520407114]
60. TMECC (Test Methods for the Examination of Composts and Composting). (2002). In: Thompson, W., Leege, P., Millner, P., Watson, M.E. (Eds.). The US Composting Council, U. S. Government Printing Office.
61. Waterhouse, A.L., (2002). Determination of Total Phenolics, in Current Protocols in Food Analytical Chemistry, I1.1.1-I1.1.8, John Wiley and Sons, Inc, Hoboken, N. J.
62. Zucconi, F., Monaco, A., Forte, M., Bertoldi, M. (1985). Phytotoxins during the stabilization of organic matter. In: Gasser, J. K. R. ed. Composting of agricultural and other wastes. London and New York, Elsevier Applied Science. pp. 73-88.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Heidari M. Evaluation of allelopathic effects of wood chips of some ornamental trees and shrubs in Khuzestan province. FOP 2024; 9 (1) :119-134
URL: http://flowerjournal.ir/article-1-304-fa.html

حیدری مختار. ارزیابی اثرهای دگرآسیبی خرده چوب برخی درختان و درختچه‌های زینتی در استان خوزستان. گل و گیاهان زینتی. 1403; 9 (1) :119-134

URL: http://flowerjournal.ir/article-1-304-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 9، شماره 1 - ( بهار و تابستان 1403 ) برگشت به فهرست نسخه ها
گل و گیاهان زینتی Flower and Ornamental Plants
Persian site map - English site map - Created in 0.05 seconds with 43 queries by YEKTAWEB 4732