[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما :: ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو نشریه و مقاله ها::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات وبگاه::
بایگانی مقاله های زیر چاپ::
وبگاه های نمایه کننده::
اسامی داوران::
مبانی اخلاقی نشریه::
آمار سایت::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
شماره شاپا
۲۶۷۶۵۹۹۳
..
ناشر
انجمن گل و گیاهان زینتی ایران
پژوهشکده گل و گیاهان زینتی
..
پیوندهای مفید

انجمن گل و گیاهان زینتی ایران

پژوهشکده ملی گل و گیاهان زینتی
..
آمارهای سایت
..
:: دوره 9، شماره 2 - ( پاییز و زمستان 1403 ) ::
جلد 9 شماره 2 صفحات 260-251 برگشت به فهرست نسخه ها
اثرهای سطح های مختلف بنزیل آدنین بر باززایی و رشد درون شیشه‌‌ای ونوس حشره‌‌خوار (Dionaea muscipula Ellis.)
منیژه اسلامی ، مهناز کریمی* ، حسین مرادی
دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری
چکیده:   (1834 مشاهده)
ونوس حشره‌‌خوار یک گیاه زینتی در حال نابودی است که مطالعه کمی بر ریزافزایی آن انجام شده است. سیتوکینین‌‌ها گروهی از هورمون‌‌های رشد گیاهی هستند که تقسیم یاخته ای، تمایز یاخته ای، آغاز ساقه‌‌دهی و رشد را در بسیاری از گیاهان تحریک می‌‌کنند. هدف از پژوهش حاضر، بررسی اثر غلظت‌‌های مختلف بنزیل آدنین بر باززایی و رشد ونوس حشره‌‌خوار بود. بدین منظور، آزمایشی به صورت طرح کاملاً تصادفی با 3 تکرار انجام شد. گیاهچه‌‌های کشت بافتی که به روش کشت اندام گیاهی افزایش یافت انتخاب شده و در محیط کشت موراشیگ و اسکوگ با غلظت‌‌های مختلف بنزیل آدنین (1/0، 3/0 و 5/0 میلی‌‌گرم در لیتر) کشت شدند. پس از گذشت 155 روز برخی از صفات مورفولوژیک و بیوشیمیایی از جمله تعداد پینه‌‌های رویان­زا، تعداد برگ، تعداد ریشه، درصد ریشه‌‌زایی، درصد باززایی و رنگیزه‌‌های فتوسنتزی مورد بررسی قرار گرفت. بر اساس نتایج به­دست آمده اثر غلظت‌‌های مختلف بنزیل آدنین بر درصد ریشه‌‌زایی و تعداد ریشه در سطح احتمال 1% و بر درصد باززایی، تعداد برگ و تعداد در سطح احتمال 5% معنی‌‌دار بود. بیشترین درصد ریشه زایی با 97/99% در غلظت 1/0 میلی گرم در لیتر بنزیل آدنین و کمترین آن مربوط به غلظت 3/0 میلی‌‌گرم بر لیتر بود. بیشترین درصد باززایی، تعداد ریشه و تعداد برگ به ترتیب با میانگین 74/94%، 3 عدد و 3/33 عدد در غلظت 1/0 میلی‌‌گرم در لیتر بنزیل آدنین ثبت شد. اثر غلظت‌‌های مختلف بنزیل آدنین بر نسبت کلروفیل a/b در سطح احتمال 1% و بر میزان کلروفیل b، کلروفیل کل و کارتنوئید در سطح احتمال 5% معنی‌‌دار بود. با توجه به نتایج پژوهش حاضر غلظت 1/0 میلی‌‌گرم در لیتر بنزیل آدنین تاثیر معنی‌‌داری در مقایسه با دو غلظت 3/0 و 5/0 میلی گرم در لیتر بر درصد باززایی، درصد ریشه‌‌زایی، تعداد ریشه، تعداد برگ، محتوای کلروفیل و کارتنوئید داشت. اگر هدف از کشت بافت گیاه ونوس حشره‌‌خوار تعداد پینه‌‌های رویان.­زا بالا در مدت زمان کم باشد استفاده از غلظت 3/0 میلی‌‌گرم بر لیتر بهترین نتیجه را خواهد داشت.
 
واژه‌های کلیدی: سیتوکینین، کشت بافت، کلروفیل، گیاه زینتی
متن کامل [PDF 600 kb]   (419 دریافت)    
نوع مطالعه: كاربردي | موضوع مقاله: تخصصي
دریافت: 1403/2/30 | پذیرش: 1403/7/27 | انتشار: 1403/12/8
فهرست منابع
1. AL-Bakkar, A. H. A.-Q. (2022). Effect of benzyl adenine on the vegetative and root growth of seedling of Myrtus communis L.:A Review. British Journal of Global Ecology and Sustainable Development, 7, 19-27.
2. Arli, N. M., & Noli, Z. A. (2024). Shoot induction of Dendrobium lasianthera JJ smith with several types of cytokinins through in vitro culture. http://dx.doi.org/10.29303/jppipa.v10i4.5324 [DOI:10.29303/jppipa.v10i4.5324]
3. Bayhan, N., & Yücesan, B. (2024). The impact of sucrose and 6-benzylaminopurine on shoot propagation and vitrification in Aronia melanocarpa (black chokeberry). Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 156(2), 55. [DOI:10.1007/s11240-023-02652-x]
4. Bergman, C. M. (2017). The Vascular Flora of Lee County, Texas. Lundellia, 20(1), 60-114. [DOI:10.25224/1097-993X-20.1.60]
5. Burr, C. A., Sun, J., Yamburenko, M. V., Willoughby, A., Hodgens, C., Boeshore, S. L., Elmore, A., Atkinson, J., Nimchuk, Z. L., & Bishopp, A. (2020). The HK5 and HK6 cytokinin receptors mediate diverse developmental pathways in rice. Development, 147(20), dev191734. [DOI:10.1242/dev.191734]
6. Darwin, C., & Darwin, F. (1888). Insectivorous plants. J. Murray. 378p. [DOI:10.5962/bhl.title.56070]
7. Dakah, A., Zaid, S., Suleiman, M., Abbas, S., & Wink, M. (2014). In vitro propagation of the medicinal plant Ziziphora tenuior L. and evaluation of its antioxidant activity. Saudi Journal of Biological Sciences, 21(4), 317-323. [DOI:10.1016/j.sjbs.2013.12.002]
8. Dewir, Y. H., Murthy, H. N., Ammar, M. H., Alghamdi, S. S., Al-Suhaibani, N. A., Alsadon, A. A., & Paek, K. Y. (2016). In vitro rooting of leguminous plants: Difficulties, alternatives, and strategies for improvement. Horticulture, Environment, and Biotechnology, 57, 311-322. [DOI:10.1007/s13580-016-0060-6]
9. Dobránszki, J., & Mendler-Drienyovszki, N. (2014). Cytokinin-induced changes in the chlorophyll content and fluorescence of in vitro apple leaves. Journal of plant physiology, 171(16), 1472-1478. [DOI:10.1016/j.jplph.2014.06.015]
11. Ellison, A. M., & Gotelli, N. J. (2009). Energetics and the evolution of carnivorous plants-Darwin's 'most wonderful plants in the world'. Journal of experimental botany, 60(1), 19-42. [DOI:10.1093/jxb/ern179]
12. García-Ramírez, Y. (2024). Morphological and physiological responses of proliferating shoots of bamboo to cytokinin. Vegetos, 37(1), 6-15. [DOI:10.1007/s42535-023-00593-6]
13. Gentile, A., Frattarelli, A., Nota, P., Condello, E., & Caboni, E. (2017). The aromatic cytokinin meta-topolin promotes in vitro propagation, shoot quality and micrografting in Corylus colurna L. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 128, 693-703. [DOI:10.1007/s11240-016-1150-y]
14. Horner, J. D., Hodcroft, E. B., Hale, A. M., & Williams, D. A. (2014). Clonality, genetic variation, and the origin of isolated western populations of the carnivorous plant, Sarracenia alata1. The Journal of the Torrey Botanical Society, 141(4), 326-337. [DOI:10.3159/TORREY-D-13-00080.1]
15. Jain, S. M. (2010). Protocols for in vitro propagation of ornamental plants. Springer. 396p. [DOI:10.1007/978-1-60327-114-1]
16. kaviani, b., & ghaffari, s. (2016). The effect of different concentrations of kinetin and naphthalene acetic acid on micropropagation of Lisianthus (Eustoma grandiflorum). Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 28(5), 1088-1096. (In Persian).
17. Khajehyar, R., Tripepi, R., Love, S., & Price, W. J. (2024). Optimization of tissue culture medium for little-leaf mockorange (Philadelphus microphyllus A. Gray) by adjusting cytokinin and selected mineral components. HortScience, 59(1), 18-25. [DOI:10.21273/HORTSCI17440-23]
18. Kudo, T., Kiba, T., & Sakakibara, H. (2010). Metabolism and long‐distance translocation of cytokinins. Journal of integrative plant biology, 52(1), 53-60. [DOI:10.1111/j.1744-7909.2010.00898.x]
19. Lichtenthaler, H. K. (1987). Chlorophylls and carotenoids: pigments of photosynthetic biomembranes. In Methods in enzymology (Vol. 148, pp. 350-382). Elsevier. [DOI:10.1016/0076-6879(87)48036-1]
20. Martins, J., Santos, E., Rodrigues, L., Gontijo, A., & Falqueto, A. (2018). Effects of 6-benzylaminopurine on photosystem II functionality and leaf anatomy of in vitro cultivated Aechmea blanchetiana. Biologia Plantarum, 62, 793-800. [DOI:10.1007/s10535-018-0822-3]
21. Mehbub, H., Akter, A., Akter, M. A., Mandal, M. S. H., Hoque, M. A., Tuleja, M., & Mehraj, H. (2022). Tissue culture in ornamentals: cultivation factors, propagation techniques, and its application. Plants, 11(23), 3208. https://www.mdpi.com/2223-7747/11/23/3208 [DOI:10.3390/plants11233208]
22. Miandoab, l. Z., Hejazi, M. A., & Nasiri, M. (2018). The effect of cytokinin on growth and physiology of Dunaliella salina. Journal of Applied Biology, 31(1), 121-132. https://www.magiran.com/paper/1912287
23. Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(3). [DOI:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x]
24. Norton, M. E., & Boe, A. A. (1982). In vitro propagation of ornamental rosaceous plants1. HortScience, 17(2), 190-191. [DOI:10.21273/HORTSCI.17.2.190]
26. Pari, M., Lee, W. Q., Wong, C. K. F., & Teh, C. Y. (2024). Induction of callus culture through plant growth regulators supplementation and the effect of elicitors on enhancement of betalain synthesis using Gomphrena globosa. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 156(1), 19. [DOI:10.1007/s11240-023-02628-x]
27. Rosa, W. S., Martins, J. P. R., Rodrigues, E. S., de Almeida Rodrigues, L. C., Gontijo, A. B. P. L., & Falqueto, A. R. (2018). Photosynthetic apparatus performance in function of the cytokinins used during the in vitro multiplication of Aechmea blanchetiana (Bromeliaceae). Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC),133, 339-350. [DOI:10.1007/s11240-018-1385-x]
28. Sharifi, a., keykha, f., yazdi, m., & bagheri, a. (2017). Effect of cultivar and plant growth regulators on in vitro regeneration of Lilium Spp. utilizing thin cell layer Explants. Journal Of Horticultural Science, 31(3), 555-564.
29. Šmeringai, J., Schrumpfová, P. P., & Pernisová, M. (2023). Cytokinins-regulators of de novo shoot organogenesis. Frontiers in Plant Science, 14, 1239133. [DOI:10.3389/fpls.2023.1239133]
30. Viswanath, M., Ravindra Kumar, K., Chetanchidambar, N., & Mahesh, S. (2023). Regeneration mechanisms in plant tissue culture: A. J. Pharm. Innov, 12, 2948-2952.
31. ندارد
32. AL-Bakkar, A. H. A.-Q. (2022). Effect of benzyl adenine on the vegetative and root growth of seedling of Myrtus communis L.:A Review. British Journal of Global Ecology and Sustainable Development, 7, 19-27.
33. Arli, N. M., & Noli, Z. A. (2024). Shoot induction of Dendrobium lasianthera JJ smith with several types of cytokinins through in vitro culture. http://dx.doi.org/10.29303/jppipa.v10i4.5324 [DOI:10.29303/jppipa.v10i4.5324]
34. Bayhan, N., & Yücesan, B. (2024). The impact of sucrose and 6-benzylaminopurine on shoot propagation and vitrification in Aronia melanocarpa (black chokeberry). Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 156(2), 55. [DOI:10.1007/s11240-023-02652-x]
35. Bergman, C. M. (2017). The Vascular Flora of Lee County, Texas. Lundellia, 20(1), 60-114. [DOI:10.25224/1097-993X-20.1.60]
36. Burr, C. A., Sun, J., Yamburenko, M. V., Willoughby, A., Hodgens, C., Boeshore, S. L., Elmore, A., Atkinson, J., Nimchuk, Z. L., & Bishopp, A. (2020). The HK5 and HK6 cytokinin receptors mediate diverse developmental pathways in rice. Development, 147(20), dev191734. [DOI:10.1242/dev.191734]
37. Darwin, C., & Darwin, F. (1888). Insectivorous plants. J. Murray. 378p. [DOI:10.5962/bhl.title.56070]
38. Dakah, A., Zaid, S., Suleiman, M., Abbas, S., & Wink, M. (2014). In vitro propagation of the medicinal plant Ziziphora tenuior L. and evaluation of its antioxidant activity. Saudi Journal of Biological Sciences, 21(4), 317-323. [DOI:10.1016/j.sjbs.2013.12.002]
39. Dewir, Y. H., Murthy, H. N., Ammar, M. H., Alghamdi, S. S., Al-Suhaibani, N. A., Alsadon, A. A., & Paek, K. Y. (2016). In vitro rooting of leguminous plants: Difficulties, alternatives, and strategies for improvement. Horticulture, Environment, and Biotechnology, 57, 311-322. [DOI:10.1007/s13580-016-0060-6]
40. Dobránszki, J., & Mendler-Drienyovszki, N. (2014). Cytokinin-induced changes in the chlorophyll content and fluorescence of in vitro apple leaves. Journal of plant physiology, 171(16), 1472-1478. [DOI:10.1016/j.jplph.2014.06.015]
42. Ellison, A. M., & Gotelli, N. J. (2009). Energetics and the evolution of carnivorous plants-Darwin's 'most wonderful plants in the world'. Journal of experimental botany, 60(1), 19-42. [DOI:10.1093/jxb/ern179]
43. García-Ramírez, Y. (2024). Morphological and physiological responses of proliferating shoots of bamboo to cytokinin. Vegetos, 37(1), 6-15. [DOI:10.1007/s42535-023-00593-6]
44. Gentile, A., Frattarelli, A., Nota, P., Condello, E., & Caboni, E. (2017). The aromatic cytokinin meta-topolin promotes in vitro propagation, shoot quality and micrografting in Corylus colurna L. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 128, 693-703. [DOI:10.1007/s11240-016-1150-y]
45. Horner, J. D., Hodcroft, E. B., Hale, A. M., & Williams, D. A. (2014). Clonality, genetic variation, and the origin of isolated western populations of the carnivorous plant, Sarracenia alata1. The Journal of the Torrey Botanical Society, 141(4), 326-337. [DOI:10.3159/TORREY-D-13-00080.1]
46. Jain, S. M. (2010). Protocols for in vitro propagation of ornamental plants. Springer. 396p. [DOI:10.1007/978-1-60327-114-1]
47. kaviani, b., & ghaffari, s. (2016). The effect of different concentrations of kinetin and naphthalene acetic acid on micropropagation of Lisianthus (Eustoma grandiflorum). Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology), 28(5), 1088-1096. (In Persian).
48. Khajehyar, R., Tripepi, R., Love, S., & Price, W. J. (2024). Optimization of tissue culture medium for little-leaf mockorange (Philadelphus microphyllus A. Gray) by adjusting cytokinin and selected mineral components. HortScience, 59(1), 18-25. [DOI:10.21273/HORTSCI17440-23]
49. Kudo, T., Kiba, T., & Sakakibara, H. (2010). Metabolism and long‐distance translocation of cytokinins. Journal of integrative plant biology, 52(1), 53-60. [DOI:10.1111/j.1744-7909.2010.00898.x]
50. Lichtenthaler, H. K. (1987). Chlorophylls and carotenoids: pigments of photosynthetic biomembranes. In Methods in enzymology (Vol. 148, pp. 350-382). Elsevier. [DOI:10.1016/0076-6879(87)48036-1]
51. Martins, J., Santos, E., Rodrigues, L., Gontijo, A., & Falqueto, A. (2018). Effects of 6-benzylaminopurine on photosystem II functionality and leaf anatomy of in vitro cultivated Aechmea blanchetiana. Biologia Plantarum, 62, 793-800. [DOI:10.1007/s10535-018-0822-3]
52. Mehbub, H., Akter, A., Akter, M. A., Mandal, M. S. H., Hoque, M. A., Tuleja, M., & Mehraj, H. (2022). Tissue culture in ornamentals: cultivation factors, propagation techniques, and its application. Plants, 11(23), 3208. https://www.mdpi.com/2223-7747/11/23/3208 [DOI:10.3390/plants11233208]
53. Miandoab, l. Z., Hejazi, M. A., & Nasiri, M. (2018). The effect of cytokinin on growth and physiology of Dunaliella salina. Journal of Applied Biology, 31(1), 121-132. https://www.magiran.com/paper/1912287
54. Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(3). [DOI:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x]
55. Norton, M. E., & Boe, A. A. (1982). In vitro propagation of ornamental rosaceous plants1. HortScience, 17(2), 190-191. [DOI:10.21273/HORTSCI.17.2.190]
57. Pari, M., Lee, W. Q., Wong, C. K. F., & Teh, C. Y. (2024). Induction of callus culture through plant growth regulators supplementation and the effect of elicitors on enhancement of betalain synthesis using Gomphrena globosa. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 156(1), 19. [DOI:10.1007/s11240-023-02628-x]
58. Rosa, W. S., Martins, J. P. R., Rodrigues, E. S., de Almeida Rodrigues, L. C., Gontijo, A. B. P. L., & Falqueto, A. R. (2018). Photosynthetic apparatus performance in function of the cytokinins used during the in vitro multiplication of Aechmea blanchetiana (Bromeliaceae). Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC),133, 339-350. [DOI:10.1007/s11240-018-1385-x]
59. Sharifi, a., keykha, f., yazdi, m., & bagheri, a. (2017). Effect of cultivar and plant growth regulators on in vitro regeneration of Lilium Spp. utilizing thin cell layer Explants. Journal Of Horticultural Science, 31(3), 555-564.
60. Šmeringai, J., Schrumpfová, P. P., & Pernisová, M. (2023). Cytokinins-regulators of de novo shoot organogenesis. Frontiers in Plant Science, 14, 1239133. [DOI:10.3389/fpls.2023.1239133]
61. Viswanath, M., Ravindra Kumar, K., Chetanchidambar, N., & Mahesh, S. (2023). Regeneration mechanisms in plant tissue culture: A. J. Pharm. Innov, 12, 2948-2952.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Eslami M, Karimi M, Moradi H. Effects of different levels of benzyl adenine on in vitro regeneration and growth of Venus flytrap (Dionaea muscipula Ellis.). FOP 2024; 9 (2) :251-260
URL: http://flowerjournal.ir/article-1-306-fa.html

اسلامی منیژه، کریمی مهناز، مرادی حسین. اثرهای سطح های مختلف بنزیل آدنین بر باززایی و رشد درون شیشه‌‌ای ونوس حشره‌‌خوار (Dionaea muscipula Ellis.). گل و گیاهان زینتی. 1403; 9 (2) :251-260

URL: http://flowerjournal.ir/article-1-306-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 9، شماره 2 - ( پاییز و زمستان 1403 ) برگشت به فهرست نسخه ها
گل و گیاهان زینتی Flower and Ornamental Plants
Persian site map - English site map - Created in 0.04 seconds with 45 queries by YEKTAWEB 4732