[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما :: ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو نشریه و مقاله ها::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات وبگاه::
بایگانی مقاله های زیر چاپ::
وبگاه های نمایه کننده::
اسامی داوران::
مبانی اخلاقی نشریه::
آمار سایت::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
شماره شاپا
۲۶۷۶۵۹۹۳
..
ناشر
انجمن گل و گیاهان زینتی ایران
پژوهشکده گل و گیاهان زینتی
..
پیوندهای مفید

انجمن گل و گیاهان زینتی ایران

پژوهشکده ملی گل و گیاهان زینتی
..
آمارهای سایت
..
:: دوره 7، شماره 2 - ( پاییز و زمستان 1401 ) ::
جلد 7 شماره 2 صفحات 358-349 برگشت به فهرست نسخه ها
بهبود تولید پاگیاه در سانسوریای پاکوتاه به کمک اختلال در چیرگی انتهایی
متین کاظم زاده ، زهرا رضایی قلعه ، مصطفی خوشحال سرمست*
گروه علوم باغبانی و فضای سبز،‌ دانشکده تولید گیاهی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان،‌ گرگان‌
چکیده:   (1449 مشاهده)
افزایش هم‌گروهی گیاهانِ زینتی به‌ویژه در گونه‌‌های بافت‌‌ناهمسان بسیار بااهمیت است. با توجه به اینکه تنها راه افزایش هم‌گروهی گیاه سانسوریای ابلق استفاده از تولید پاگیاه با منشأ ریزوم است، بنابراین بهبود راندمان باززایی آن‌ها با استفاده از این روش بسیار بااهمیت است. بدین منظور در این مطالعه با استفاده از تنظیم‌کننده رشد بنزیل آدنین (سایتوکنین) و استفاده از تیمارهای مکانیکی زخم زنی، رشد مریستم انتهایی برای بهبود تولید پاگیاه دچار اختلال شد. این آزمایش در شرایط کنترل‌شده گلخانه و در داخل گلدان‌‌های پلاستیکی روی سانسوریای پاکوتاه انجام شد. ارزیابی‌‌ها بیانگر این است که استفاده از تیمار ترکیبی حذف جوانه‌‌ انتهایی برای کنترل چیرگی انتهایی به همراه محلول‌پاشی برگی 50 میکرومولار بنزیل‌‌آدنین به‌صورت معنی‌‌داری بر تعداد پاگیاه‌‌های تولیدشده می‌‌افزاید. این تیمار همچنین در بهبود ارتفاع، قطر و وزن پاگیاه‌‌های تولیدشده به‌مراتب اثر بهتری نسبت به دیگر تیمارها و شاهد داشت. به نظر می‌‌رسد که غلظت‌‌های بالای سایتوکنین اثر منفی در باززایی داشته و استفاده از غلظت‌‌های کمتر به‌تنهایی در از بین بردن چیرگی انتهایی اثر جزئی دارد. پیشنهاد می‌‌شود که حذف چیرگی انتهایی به همراه محلول‌پاشی برگی 50 میکرومولار بنزیل‌آدنین دستکم به میزان یک ونیم برابر میزان باززایی و تا دو برابر تعداد ریشه و وزن گیاهک‌های باززایی شده از نیساگ را افزایش دهد.
واژه‌های کلیدی: ازدیاد همگروهی، بنزیل آدنین، ریزوم، مریستم انتهایی
متن کامل [PDF 774 kb]   (268 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تخصصي
دریافت: 1401/3/21 | پذیرش: 1401/6/29 | انتشار: 1402/4/19
فهرست منابع
1. رفرنس های متنی مثل خروجی کراس رف را در اینجا وارد کرده و تایید کنید -------------Amling, J.W., Keever, G.J., Kessler, J.R.J, Eakes, D.J. (2007). Benzyl Adenine (BA) promotes ramet formation in Hemerocallis itrina. Journal of Environment and Horticulture, 25, 9-12. [DOI:10.24266/0738-2898-25.1.9]
2. Arnold MA. (2004) Sansevieria trifasciata. In: Landscape plants for Texas and environments, Third Edition, Stipes Publishing, USA.
3. Booker, J., Chatfield, S., Leyser, O. (2003). Auxin acts in xylem-associated or medullary cells to mediate apical dominance. The Plant Cell, 15, 495-507. [DOI:10.1105/tpc.007542]
4. Burrows, G.E., Doley, D.D., Haines, R.J., Nikles, D.G. (1988). In vitro propagation of Araucaria cunninghamii and other species of the Araucariaceae via axillary meristems. Australian Journal of Botany, 36, 665-676 [DOI:10.1071/BT9880665]
5. Carey, D., Whipker, B., Mc-Call, I., Buhler, W. (2008). Benzyl adenine foliar sprays increase offsets in Sempervivum and Echeveria. HortScience, 53, 19-21.
6. Chatfield, S.P., Stirnberg, P., Forde, B.G., Leyser, O. (2000). The hormonal regulation of axillary bud growth in Arabidopsis. The Plant Journal 24(2), 159-169. [DOI:10.1046/j.1365-313x.2000.00862.x]
7. Choudhary, A.K., Ray, A.K., Jha, S., Mishra, IN. (2011). Callus formation, shoot initiation and in vitro culture of Aloe vera. Biotechnology, Bioinformatics and Bioengineering, 1(4), 551-553.
8. Cline, M.G. (1996). Exogenous auxin effects on lateral bud outgrowth in decapitated shoots. Annual Botany, 78, 255-266. [DOI:10.1006/anbo.1996.0119]
9. Daneshvar, M.H., Moallemi, N., Zadeh, N.A. (2013). The effects of different media on shoot proliferation from the shoot tip of Aloe vera L. Jundishapur Journal of Natural Pharmaceutical Products, 8, 93-97. [DOI:10.5812/jjnpp.4820]
10. Domagalska, M.A., Leyser, O. (2011). Signal integration in the control of shoot branching. Nature Reviews Molecular Cell Biology, 12, 211-221. [DOI:10.1038/nrm3088]
11. Duan, H., Pei, Y.L., Deng, M.L.Y., Xiao, L.K., Smith, L.L., McAvoy, W., Zhao, R.J.D., Zheng, X., Thammina, C. (2006). Auxin, cytokinin and abscisic acid: Biosynthetic and catabolic genes and their potential applications in ornamental crops. Journal of Crops Improvement, 347-364. doi.org/10.1300/J411v18n01_03. [DOI:10.1300/J411v18n01_03]
12. El-Ghamery, A.A. Mousa, M. (2017). Investigation on the effect of benzyladenine on the germination, radicle growth and meristematic cells of Nigella sativa L. and Allium cepa L. Annals of Agricultural Sciences, 62, 11-21. [DOI:10.1016/j.aoas.2016.11.002]
13. Ferguson, B.J., Beveridge, C.A. (2009). Roles for auxin, cytokinin, and strigolactone in regulating shoot branching. Plant Physiology, 149, 1929- 1944. [DOI:10.1104/pp.109.135475]
14. Garner, J.M., Keever, G.J., Eakes, D.J., Keesler, J.R. (1998). Sequential BA application enhance offset formation in Hosta. HortScience, 33,707-709. [DOI:10.21273/HORTSCI.33.4.707]
15. Hartmann, H.T., Kester, D.E., Davies, F.T., Geneve, R. (2002). Plant Propagation Principle and Practices. 7th edition, Prentice Hall International. Englewood Cliffs. New York, USA.
16. Hashem AD, Kaviani B. (2010) In vitro proliferation of an important medicinal plant Aloe - A method for rapid production. Australian Journal of Crop Science 4, 216-222.
17. Hazrati, S., Sarvestani, Z.T., Babaei, A. (2012). Enhancing yield and aloin concentration of Aloe vera plants by simultaneous application of N and benzyladenine. Journal of Medicinal Plants Research, 6, 1834-1841. [DOI:10.5897/JMPR11.499]
18. Iizumi, M., Amaki, W. (2011). Micropropagation of Haworthia cymbiformis through Thin-Cell-Layer Tissue Culture©.In Combined Proceedings International Plant Propagator's Society, p. 288.
19. Kalimuthu, K., Vijayakumar, S., Senthilkumar, R.R., Suresh, K.M. (2010). Micropropagation of Aloe vera Linn. - a medicinal plant. International Journal of Biotechnoly and Biochemstry, 6, 405-410.
20. Kerstetter, R.A., Hake, S. (1997). Shoot meristem formation in vegetative development. Plant Cell, 9, 1001-1010. [DOI:10.1105/tpc.9.7.1001]
21. Khalighi, A., Hojati, Y., Babalar, M., Naderi, R. (2005). Effects on nutrition solutions, cytokine and soil texure on bulb growth, quality of bulb and number of bulblet in Draw in hybrid tulip Apeldoorn. Journal of Pajoush Sazandegi, 73, 58-64.
22. Khanam, M., Sharma, G.K. (2014). Rapid in vitro propagation of Aloe vera L. with some growth regulators using lateral shoots as explants. World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, 3(3), 2278-4357.
23. Kiran, S., Tirkey, A., Jha, Z., Porte, S.S. (2017). In vitro regeneration of Aloe vera (Aloe barbadensis Mill). International Journal of Current Microbiology and Applied Science, 6, 1829-1834. [DOI:10.20546/ijcmas.2017.611.218]
24. Ljung, K., Bhalerao, R.P., Sandberg, G. (2001). Sites and homeostatic control of auxin biosynthesis in Arabidopsis during vegetative growth. The Plant Journal, 28(4), 465-474. [DOI:10.1046/j.1365-313X.2001.01173.x]
25. Mimaki, Y., Inoue, T., Kuroda, M., Sashida, Y. (1996). Steroidal saponins from Sansevieria trifasciata. Phytochemistry, 43,1325-1331 [DOI:10.1016/S0031-9422(96)00397-4]
26. Müller, D. Leyser, O. (2011) Auxin, cytokinin and the control of shoot branching. Annual Botany London, 107, 1203- 1212. [DOI:10.1093/aob/mcr069]
27. Nahed, G., Aziz, E. (2007) Stimuatory Effect of NPK Fertilizer and Benzyladenine on Growth and Chemical Constituents of Codiaeum variegatum L. Plant. Am-Eurasian. Journal of Environmental Scence, 2, 711-719.
28. Relf, D., Ball, E.C. (2019). Propagation by cuttings, layering and division. Virginia Cooperative Extension. Virginia Teck. Virginia State University. VT/0919/426-002.
29. SalehiSardoei, A., Sarhadi, H., RohanyYazdi, M., Arbabi, M., Jahantigh, M. (2013) Effect of gibberellic acid and benzylaadenine growth regulators on offsets production of Aloe Barbadensis at greenhouse conditions. International Journal of Advance Biological and Biomedical Research 1, 1457-1465.
30. Shimizu-Sato, S., Mori, H. (2001). Control of outgrowth and dormancy in axillary buds. Plant Physiology, 127, 1405-1413. [DOI:10.1104/pp.010841]
31. Shimizu-Sato, S., Tanaka, M., Mori, H. (2009). Auxin-cytokinin interactions in the control of shoot branching. Plant Molecular Biology, 69(4), 429-435. [DOI:10.1007/s11103-008-9416-3]
32. Shudo, K. (1994). Chemistry of phenyl urea cytokinins. pp. 35-42, In: D. Y. Mokk and M. C. Mok (Eds.) Cytokinins Chemistry Activity and Function, CRC Press, Boca Raton. [DOI:10.1201/9781351071284-3]
33. Sreenivasan, V., Somasundaram, S., Ravindran, D., Manikandan, V., Narayanasamy, R. (2011). Microstructural, physico-chemical and mechanical characterisation of Sansevieria cylindrical bres- An exploratory investigation. Materials and Design, 32, 453-461. [DOI:10.1016/j.matdes.2010.06.004]
34. Surafel, S., Gamachu, O., Abel, D. (2018) In vitro propagation of Aloe vera Linn from shoot tip culture. GSC Biological and Pharmaceutical Science 4, 001-006. [DOI:10.30574/gscbps.2018.4.2.0052]
35. Takawira, R., Nordal, I. (2001). The genus Sansevieria (family Dracaenaceae) in Zimbabwe. In: XX International Eucarpia Symposium, Section Ornamentals, Strategies for New Ornamentals-Part II 572, pp 189-198. [DOI:10.17660/ActaHortic.2002.572.22]
36. Tchegnitegni, B.T., Teponno, R.B., Jenett-Siems, K., Melzig, M.F., Miyamoto, T., Tapondjou, L.A. (2017). A dihydrochalcone derivative and further steroidal saponins from Sansevieria trifasciata Prain Zeitschrift fur Naturforschung C. Journal of Biosciences, 72, 477-482. doi:10.1515/znc-2017-0027 [DOI:10.1515/znc-2017-0027]
37. Teponno, R.B., Tanaka, C., Jie, B., Tapondjou, L.A., Miyamoto, T. (2016). Trifasciatosides A-J, Steroidal Saponins from Sansevieriatrifasciata. Chemical and Pharmceutical Bulletin, 64,1347-1355. doi:10.1248/cpb.c1600337. [DOI:10.1248/cpb.c16-00337]
38. Wolverton, B.C., Johnson, A., Bounds, K. (1989). Interior landscape plants for indoor air pollution abatement. NTRS -NASA Technical Reports Server.
39. Zhang, N. Hasenstein, H. (1999). Initiation and elongation of lateral roots in Lac ca sativa. International Journal of Plant Science, 160, 511-519. [DOI:10.1086/314147]
40. Amling, J.W., Keever, G.J., Kessler, J.R.J, Eakes, D.J. (2007). Benzyl Adenine (BA) promotes ramet formation in Hemerocallis itrina. Journal of Environment and Horticulture, 25, 9-12. [DOI:10.24266/0738-2898-25.1.9]
41. Arnold MA. (2004) Sansevieria trifasciata. In: Landscape plants for Texas and environments, Third Edition, Stipes Publishing, USA.
42. Booker, J., Chatfield, S., Leyser, O. (2003). Auxin acts in xylem-associated or medullary cells to mediate apical dominance. The Plant Cell, 15, 495-507. [DOI:10.1105/tpc.007542]
43. Burrows, G.E., Doley, D.D., Haines, R.J., Nikles, D.G. (1988). In vitro propagation of Araucaria cunninghamii and other species of the Araucariaceae via axillary meristems. Australian Journal of Botany, 36, 665-676 [DOI:10.1071/BT9880665]
44. Carey, D., Whipker, B., Mc-Call, I., Buhler, W. (2008). Benzyl adenine foliar sprays increase offsets in Sempervivum and Echeveria. HortScience, 53, 19-21.
45. Chatfield, S.P., Stirnberg, P., Forde, B.G., Leyser, O. (2000). The hormonal regulation of axillary bud growth in Arabidopsis. The Plant Journal 24(2), 159-169. [DOI:10.1046/j.1365-313x.2000.00862.x]
46. Choudhary, A.K., Ray, A.K., Jha, S., Mishra, IN. (2011). Callus formation, shoot initiation and in vitro culture of Aloe vera. Biotechnology, Bioinformatics and Bioengineering, 1(4), 551-553.
47. Cline, M.G. (1996). Exogenous auxin effects on lateral bud outgrowth in decapitated shoots. Annual Botany, 78, 255-266. [DOI:10.1006/anbo.1996.0119]
48. Daneshvar, M.H., Moallemi, N., Zadeh, N.A. (2013). The effects of different media on shoot proliferation from the shoot tip of Aloe vera L. Jundishapur Journal of Natural Pharmaceutical Products, 8, 93-97. [DOI:10.5812/jjnpp.4820]
49. Domagalska, M.A., Leyser, O. (2011). Signal integration in the control of shoot branching. Nature Reviews Molecular Cell Biology, 12, 211-221. [DOI:10.1038/nrm3088]
50. Duan, H., Pei, Y.L., Deng, M.L.Y., Xiao, L.K., Smith, L.L., McAvoy, W., Zhao, R.J.D., Zheng, X., Thammina, C. (2006). Auxin, cytokinin and abscisic acid: Biosynthetic and catabolic genes and their potential applications in ornamental crops. Journal of Crops Improvement, 347-364. doi.org/10.1300/J411v18n01_03. [DOI:10.1300/J411v18n01_03]
51. El-Ghamery, A.A. Mousa, M. (2017). Investigation on the effect of benzyladenine on the germination, radicle growth and meristematic cells of Nigella sativa L. and Allium cepa L. Annals of Agricultural Sciences, 62, 11-21. [DOI:10.1016/j.aoas.2016.11.002]
52. Ferguson, B.J., Beveridge, C.A. (2009). Roles for auxin, cytokinin, and strigolactone in regulating shoot branching. Plant Physiology, 149, 1929- 1944. [DOI:10.1104/pp.109.135475]
53. Garner, J.M., Keever, G.J., Eakes, D.J., Keesler, J.R. (1998). Sequential BA application enhance offset formation in Hosta. HortScience, 33,707-709. [DOI:10.21273/HORTSCI.33.4.707]
54. Hartmann, H.T., Kester, D.E., Davies, F.T., Geneve, R. (2002). Plant Propagation Principle and Practices. 7th edition, Prentice Hall International. Englewood Cliffs. New York, USA.
55. Hashem AD, Kaviani B. (2010) In vitro proliferation of an important medicinal plant Aloe - A method for rapid production. Australian Journal of Crop Science 4, 216-222.
56. Hazrati, S., Sarvestani, Z.T., Babaei, A. (2012). Enhancing yield and aloin concentration of Aloe vera plants by simultaneous application of N and benzyladenine. Journal of Medicinal Plants Research, 6, 1834-1841. [DOI:10.5897/JMPR11.499]
57. Iizumi, M., Amaki, W. (2011). Micropropagation of Haworthia cymbiformis through Thin-Cell-Layer Tissue Culture©.In Combined Proceedings International Plant Propagator's Society, p. 288.
58. Kalimuthu, K., Vijayakumar, S., Senthilkumar, R.R., Suresh, K.M. (2010). Micropropagation of Aloe vera Linn. - a medicinal plant. International Journal of Biotechnoly and Biochemstry, 6, 405-410.
59. Kerstetter, R.A., Hake, S. (1997). Shoot meristem formation in vegetative development. Plant Cell, 9, 1001-1010. [DOI:10.1105/tpc.9.7.1001]
60. Khalighi, A., Hojati, Y., Babalar, M., Naderi, R. (2005). Effects on nutrition solutions, cytokine and soil texure on bulb growth, quality of bulb and number of bulblet in Draw in hybrid tulip Apeldoorn. Journal of Pajoush Sazandegi, 73, 58-64.
61. Khanam, M., Sharma, G.K. (2014). Rapid in vitro propagation of Aloe vera L. with some growth regulators using lateral shoots as explants. World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, 3(3), 2278-4357.
62. Kiran, S., Tirkey, A., Jha, Z., Porte, S.S. (2017). In vitro regeneration of Aloe vera (Aloe barbadensis Mill). International Journal of Current Microbiology and Applied Science, 6, 1829-1834. [DOI:10.20546/ijcmas.2017.611.218]
63. Ljung, K., Bhalerao, R.P., Sandberg, G. (2001). Sites and homeostatic control of auxin biosynthesis in Arabidopsis during vegetative growth. The Plant Journal, 28(4), 465-474. [DOI:10.1046/j.1365-313X.2001.01173.x]
64. Mimaki, Y., Inoue, T., Kuroda, M., Sashida, Y. (1996). Steroidal saponins from Sansevieria trifasciata. Phytochemistry, 43,1325-1331 [DOI:10.1016/S0031-9422(96)00397-4]
65. Müller, D. Leyser, O. (2011) Auxin, cytokinin and the control of shoot branching. Annual Botany London, 107, 1203- 1212. [DOI:10.1093/aob/mcr069]
66. Nahed, G., Aziz, E. (2007) Stimuatory Effect of NPK Fertilizer and Benzyladenine on Growth and Chemical Constituents of Codiaeum variegatum L. Plant. Am-Eurasian. Journal of Environmental Scence, 2, 711-719.
67. Relf, D., Ball, E.C. (2019). Propagation by cuttings, layering and division. Virginia Cooperative Extension. Virginia Teck. Virginia State University. VT/0919/426-002.
68. SalehiSardoei, A., Sarhadi, H., RohanyYazdi, M., Arbabi, M., Jahantigh, M. (2013) Effect of gibberellic acid and benzylaadenine growth regulators on offsets production of Aloe Barbadensis at greenhouse conditions. International Journal of Advance Biological and Biomedical Research 1, 1457-1465.
69. Shimizu-Sato, S., Mori, H. (2001). Control of outgrowth and dormancy in axillary buds. Plant Physiology, 127, 1405-1413. [DOI:10.1104/pp.010841]
70. Shimizu-Sato, S., Tanaka, M., Mori, H. (2009). Auxin-cytokinin interactions in the control of shoot branching. Plant Molecular Biology, 69(4), 429-435. [DOI:10.1007/s11103-008-9416-3]
71. Shudo, K. (1994). Chemistry of phenyl urea cytokinins. pp. 35-42, In: D. Y. Mokk and M. C. Mok (Eds.) Cytokinins Chemistry Activity and Function, CRC Press, Boca Raton. [DOI:10.1201/9781351071284-3]
72. Sreenivasan, V., Somasundaram, S., Ravindran, D., Manikandan, V., Narayanasamy, R. (2011). Microstructural, physico-chemical and mechanical characterisation of Sansevieria cylindrical bres- An exploratory investigation. Materials and Design, 32, 453-461. [DOI:10.1016/j.matdes.2010.06.004]
73. Surafel, S., Gamachu, O., Abel, D. (2018) In vitro propagation of Aloe vera Linn from shoot tip culture. GSC Biological and Pharmaceutical Science 4, 001-006. [DOI:10.30574/gscbps.2018.4.2.0052]
74. Takawira, R., Nordal, I. (2001). The genus Sansevieria (family Dracaenaceae) in Zimbabwe. In: XX International Eucarpia Symposium, Section Ornamentals, Strategies for New Ornamentals-Part II 572, pp 189-198. [DOI:10.17660/ActaHortic.2002.572.22]
75. Tchegnitegni, B.T., Teponno, R.B., Jenett-Siems, K., Melzig, M.F., Miyamoto, T., Tapondjou, L.A. (2017). A dihydrochalcone derivative and further steroidal saponins from Sansevieria trifasciata Prain Zeitschrift fur Naturforschung C. Journal of Biosciences, 72, 477-482. doi:10.1515/znc-2017-0027 [DOI:10.1515/znc-2017-0027]
76. Teponno, R.B., Tanaka, C., Jie, B., Tapondjou, L.A., Miyamoto, T. (2016). Trifasciatosides A-J, Steroidal Saponins from Sansevieriatrifasciata. Chemical and Pharmceutical Bulletin, 64,1347-1355. doi:10.1248/cpb.c1600337. [DOI:10.1248/cpb.c16-00337]
77. Wolverton, B.C., Johnson, A., Bounds, K. (1989). Interior landscape plants for indoor air pollution abatement. NTRS -NASA Technical Reports Server.
78. Zhang, N. Hasenstein, H. (1999). Initiation and elongation of lateral roots in Lac ca sativa. International Journal of Plant Science, 160, 511-519. [DOI:10.1086/314147]
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Kazemzadeh Behnamirei M, RezaeiGhaleh Z, khoshhal sarmast M. Disturbance in apical dominance results in offsets improvement in Sansieveria. FOP 2023; 7 (2) :349-358
URL: http://flowerjournal.ir/article-1-230-fa.html

کاظم زاده متین، رضایی قلعه زهرا، خوشحال سرمست مصطفی. بهبود تولید پاگیاه در سانسوریای پاکوتاه به کمک اختلال در چیرگی انتهایی. گل و گیاهان زینتی. 1401; 7 (2) :349-358

URL: http://flowerjournal.ir/article-1-230-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 7، شماره 2 - ( پاییز و زمستان 1401 ) برگشت به فهرست نسخه ها
گل و گیاهان زینتی Flower and Ornamental Plants
Persian site map - English site map - Created in 0.06 seconds with 45 queries by YEKTAWEB 4660