[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما :: ::
:: دوره 6، شماره 2 - ( پاییز و زمستان 1400 ) ::
جلد 6 شماره 2 صفحات 132-119 برگشت به فهرست نسخه ها
تاثیر ژنتیک، نوع ریزنمونه، تنظیم کننده‌‌ رشد گیاهی و بستر کشت بر باززایی درون شیشه‌‌ای رقم‌های تجاری ارکیده فالانوپسیس
فاطمه بیدرنامنی، عبدالرحمن رحیمیان بوگر، سید نجم الدین مرتضوی
دانشگاه زابل
چکیده:   (365 مشاهده)
ارکیده فالانوپسیس (Phalaenopsis)، محبوب­ترین جنس‌‌ تیره ثعلب‌‌ها می‌‌باشد که به دلیل داشتن گل‌‌های پروانه‌‌ای شکل و جذاب، بازار پسندی بالایی دارد. پژوهش حاضر با هدف بررسی اثر ژنتیک، ریزنمونه، تنظیم کننده‌‌های رشد و بستر کشت بر افزایش درون شیشه‌‌ای ارکیده فالانوپسیس انجام شد. تیمارها شامل چهار تیمار تنظیم کننده رشد بنزیل آدنین (2 و 4 میلی‌‌گرم بر لیتر BA) و ایندول بوتیریک اسید (5/0 و 1 میلی‌‌گرم در لیتر  IBA)، دو محیط کشت MS و Chen، دو ریزنمونه برگ و ساقه، و پنج رقم تجاری فالانوپسیس بود. عوامل مورد بررسی تاثیر معنی‌‌داری بر زمان تشکیل سرآغازه‌‌های برگ و ریشه، ایجاد پداژه‌‌نما، شمار برگ و ریشه داشتند. کمترین زمان لازم برای تشکیل نخستین سرآغازه‌‌های برگ و ریشه، مربوط به رقم‌‌های  Nottingham و Dubrovnik، تیمار 2 میلی‌‌گرم بر لیتر BA ترکیب با  IBAبا غلظت‌‌های 5/0 و 1 میلی گرم بر لیتر، و محیط کشت Chen بود. زمان تشکیل سرآغازه‌‌های برگ در ریزنمونه‌‌های برگی در مقایسه با ریزنمونه‌‌های ساقه، به‌طور معنی‌‌داری کمتر بود. ریزنمونه‌‌های برگی، پداژه‌‌نمای بیشتری نسبت به ریزنمونه‌‌های ساقه تولید کردند. در رقم Nottingham، تیمار BA+IBA با نسبت 2  به 1 میلی‌‌گرم بر لیتر و محیط کشت Chen بیشترین تاثیر را بر افزایش شمار پداژه‌‌نماها داشتند. افزون بر این، شمار برگ و ریشه در گیاهچه‌‌های تولید شده در شرایط درون شیشه‌‌ای، به‌طور معنی داری زیر تاثیر عوامل مختلف قرار گرفت به‌طوری که گیاهچه‌‌های رقم  Dubrovnik شمار برگ بیشتری و گیاهچه‌‌های رقم Nottingham شمار ریشه بیشتری در مقایسه با سایر رقم‌ها داشتند. بیشترین شمار برگ در تیمار BA با غلظت 2 میلی‌‌گرم در لیتر به همراه IBA با غلظت 5/0 میلی‌‌گرم در لیتر به‌دست آمد. در حالی که بیشترین شمار ریشه در تیمار BA+IBA با نسبت 2 به 1 میلی‌‌گرم در لیتر وجود داشت. در مقایسه محیط کشت‌ها نیز محیط کشت  Chenتاثیر بیشتری بر تولید برگ و ریشه داشت. این نتایج نشان داد که موفقیت باززایی رقم‌های مختلف ارکیده فالانوپسیس در شرایط درون شیشه‌‌ای، وابسته به ویژگی‌‌های ژنتیکی، نوع محیط کشت و تیمارهای تنظیم کننده رشد است. رقم Nottingham و ریزنمونه‌‌های برگی باززایی بهتری در شرایط درون شیشه‌‌ای داشت. افزایش غلظت تنظیم کننده رشد سیتوکنینی BA از 2 به 4 میلی‌‌گرم بر لیتر، منجر به افزایش زمان مورد نیاز برای تشکیل سرآغازه‌‌های برگ و ریشه، و طولانی تر شدن دوره کشت درون شیشه‌‌ای شد. 
واژه‌های کلیدی: باززایی، ریزافزایی، فالانوپسیس
متن کامل [PDF 2129 kb]   (94 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تخصصي
دریافت: 1400/8/6 | پذیرش: 1400/9/3 | انتشار: 1400/12/15
فهرست منابع
1. Abbaszadeh, S.M., Miri, S.M., Naderi, R. (2017). An effective nutrient media for asymbiotic seed germination and in vitro seedling development of Phalaenopsis 'Bahia Blanca'. Journal of Ornamental Plants, 11-20. (In Persian).
2. Andarz, Z., Daneshvar, M.H., Yari, F. (2014). Induction of callus from three explants of leaf, petiole and stem of viola odorata using growth regulators. 1st National Congress of Ornamental Flowers and Plants. Karaj, Iran. https://civilica.com/doc/331730 (In Persian).
3. Balilashaki, K., Naderi, R., Kalantari, S., Vahedi, M. (2014). PTC & B Efficient in vitro Culture Protocols for Propagating Phalaenopsis 'Cool Breeze', Plant Tissue Culture and Biotechnology, 24(2), 191-203. [DOI:10.3329/ptcb.v24i2.23552]
4. Chen, J.T., Chang, W.C. (2006). Direct somatic embryogenesis and plant regeneration from leaf explants of Phalaenopsis amabilis. Biologia Plantarum, 50(2), 169-173. [DOI:10.1007/s10535-006-0002-8]
5. Chen, J.T., Chang, W.C. (2004). Induction of repetitive embryogenesis from seed-derived protocorms of Phalaenopsis amabilis var. formosa Shimadzu. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 40(3), 290-293. [DOI:10.1079/IVP2003527]
6. Chen, Y.C., Chang, C., Chang, W.C. (2000). A reliable protocol for plant regeneration from callus culture of Phalaenopsis. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 36, 290-293. [DOI:10.1007/s11627-000-0076-5]
7. Chowdhery, H. J. (2001) Orchid diversity in north-east India. Journal of Orchid Society of India, 15, 1-17.
8. Chung, H. H., Cheng, J. T., Chang, W. C. (2007). Plant regeneration through direct somatic embryogenesis from leaf explants of Dendrobium. Biologia Plantarum, 51(2), 346-350. [DOI:10.1007/s10535-007-0069-x]
9. David, D., Jualang, A.G. Janna, O.A. (2008). Effect of NAA and BAP on protocorm proliferation of Borneo Scented Orchid, Vanda helvola. Asian Pacific Journal Molecular Biology Biotechnology, 16(3), 221-224.
10. De, L.C. (2015). Commercial Orchids. Berlin: De Gruyter Open. Available at: http://www.degruyter.com/view/product/456245.
11. Dias, L.L.C., Santa-Catarina, C., Ribeiro, D.M., Barros, R.S., Floh, E.I.S., Otoni, W.C. (2009). Ethylene and polyamine production patterns during in vitro shoot organogenesis of two passion fruit species as affected by polyamines and their inhibitor. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 99, 199-208. [DOI:10.1007/s11240-009-9594-y]
12. Dijk, E. (1988) Mykorrhizen der Orchideen. II Die Pilze. Die Orchidee. 39, 116-20
13. Fitch, M.M. (1993). High frequency somatic embryogenesis and plant regeneration from papaya hypocotyl callus. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 32, 205-212. [DOI:10.1007/BF00029844]
14. Gentile, A., Gutierrez, M.J., Martinez, J., Frattarelli, A., Nota, P., Caboni, E. (2014). Effect of metatopolin on micropropagation and adventitious shoot regeneration in Prunus rootstocks. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 118, 373-381. [DOI:10.1007/s11240-014-0489-1]
15. Huana, L.V.T., Takamura, T., Tanaka, M. (2004). Callus formation and plant regeneration from callus through somatic embryo structures in Cymbidium Orchid. Plant Science, 166(6), 1443-1449. [DOI:10.1016/j.plantsci.2004.01.023]
16. Kakouei, F., Salehi, H. (2015). Factors affecting in vitro propagation of Dracaena sanderiana Sander ex Mast. cultivars. II. MS salt strengths, subculturing times, rooting and acclimatization. Advances in Horticultural Science, 29(4), 165-170.
17. Kohsari, A., Chalavi, V., Akbarpour, V. (2020) Effect of explant types and growth regulators on callus induction and secondary metabolites of chicory (Cichorium intybus L.). Journal of Plant Production Research, DOI: 10.22069/jopp.2020.15491.2390 (In Persian).
18. Lee, Y.I., Hsu, S.T., Yeung, E.C. (2013). Orchid protocorm- like bodies are somatic embryos. American Journal of Botany, 100, 2121-2131. [DOI:10.3732/ajb.1300193]
19. Mamidala, P., Nanna, R.S. (2011). Effect of genotype, explant source and medium on in vitro regeneration of tomato. International Journal of Genetics and Molecular Biology, 3(3), 45-50.
20. Meng, Y.Y., Song, S.J., Landrein, S. 2021. In vitro organogenesis and plant regeneration of Passiflora xishuangbannaensis, a species with extremely small populations. Global Ecology and Conservation, 31, e01836. [DOI:10.1016/j.gecco.2021.e01836]
21. Moradi, S., Daylami, S.D., Arab, M., Vahdati, K. (2017). Direct somatic embryogenesis in Epipactis veratrifolia, a temperate terrestrial orchid. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 92(1), 88-97. [DOI:10.1080/14620316.2016.1228434]
22. Naing, A.H., Chung, J.D., Lim, K.B. (2011). Plant regeneration through indirect somatic embryogenesis in Coelogyne cristata Orchid. American Journal of Plant Sciences, 2, 262-267. [DOI:10.4236/ajps.2011.22028]
23. Nazemi Rafi, Z., Salehi, H. (2018). Factors affecting in vitro propagation of some genotypes of Himalayan cedar [Cedrus deodara (Roxb. ex Lamb) G. Don.]. Advances in Horticultural Science, 32(4),479-486.
24. Ozarowski, M., Thiem, B., Gryszczyńska, A., Budzianowski, J. (2013). Studies on in vitro seed germination and plant regeneration from mature leaf, internodal and petiole explants of Passiflora caerulea L. 56th Convention of the Polish Botanical Society, Interdisciplinary and Practical Significance of Botanical Sciences. Olsztyn, Poland.
25. Pathak, P., Verma, S., Prakash, A., Mahant, K.C. (2017). Regeneration competence of an ornamentally important epiphytic orchid, Rhynchostylis gigantean (Lindl.) Ridl. through leaf segments: a study in vitro. Journal of the Orchid Society of India, 31, 97-101
26. Penggow, W., Chen, J. T., Chang, W.C. (2008). Influence of growth regulators on direct embryo formation from leaf explants of Phalaenopsis Orchid. Acta Physiologiae Plantarum, 30, 507-512. [DOI:10.1007/s11738-008-0148-4]
27. Pipino, L., Braglia, L., Giovannini, A., Fascella, G. (2010). In vitro regeneration and multiplication of Passiflora hybrid "Guglielmo Betto". In: Jain, S.M., Ochatt, S.J. (Eds.), Protocols for in Vitro propagation of ornamental plants. Methods in molecular biology. Humana Press, New Jersey, 153-162. [DOI:10.1007/978-1-60327-114-1_15]
28. Ragavendran, C. (2012). In vitro propagation of nodal and shoot tip explants of Passiflora foetida L. an exotic medicinal plant. Asian Journal of Plant Science & Research, 2, 707-711.
29. Raza, G., Singh, M.B., Bhalla, P.L. (2017). In vitro plant regeneration from commercial cultivars of soybean. BioMed Research International, ID 7379693, https://doi.org/10.1155/2017/7379693 [DOI:10.1155/2017/7379693.]
30. Rocha, D.I., Vieira, L.M., Tanaka, F.A.O., Silva, L.C., Otoni, W.C. (2012). Anatomical and ultrastructural analyses of in vitro organogenesis from root explants of commercial passion fruit (Passiflora edulis Sims). Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 111, 69-78. [DOI:10.1007/s11240-012-0171-4]
31. Roy, J., Banerjee, N. (2003). Induction of callus and plant regeneration from shoot tip explants of Dendrobium fimbriatum Lindl. var. oculatum Hk.f. Scientia Horticulturae, 97(3), 333-340. [DOI:10.1016/S0304-4238(02)00156-5]
32. Sembi, J.K., Pathak, P., Verma, J. (2020). Regeneration competence of leaf explants in Cymbidium eburneum Lindl. Journal of the Orchid Society of India, 34, 17-21.
33. Shekhawat, M.S., Kannan, N., Manokari, M., Ravindran, C. P. (2015). In vitro regeneration of shoots and ex vitro rooting of an important medicinal plant Passiflora foetida L. through nodal segment cultures. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology, 13, 209-214. [DOI:10.1016/j.jgeb.2015.08.002]
34. Shylaraj, H.S., Deepthy, R., Korah, P.L. (2007). High Frequency Mericloning from Shake Cultures of Tropical Orchids Dendrobium cv. Sonia. In: Keshavachandran, R., Nazeem, P.A., Girija, D., John, P.S., Peter, K.V. (Eds.). Recent Trends in Horticultural Biotechnology. New Delhi: New India Publishing. 327-332.
35. Sidhu, S. (2010) In vitro micropropagation of medicinal plants by tissue culture. The Plymouth Student, 4(1), 432-446.
36. Singh, M.K., Sherpa, A.R., Hallan, V., Zaidi, A.A. (2007). A potyvirus in Cymbidium spp. in Northern India. Australasian Plant Disease Notes, 2(1), 11‐13. [DOI:10.1071/DN07005]
37. Ślusarkiewicz-Jarzina, A., Ponitka, A., Kaczmarek, Z. (2005). Influence of cultivar, explant source and plant growth regulator on callus induction and plant regeneration of Cannabis sativa (L.). Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica, 47(2), 145-151.
38. Solórzano-Cascante, P., Sánchez-Chiang, N., Jiménez, V.M. (2018). Explant type, culture system, 6-Benzyladenine, Meta-Topolin and Encapsulation affect indirect somatic embryogenesis and regeneration in Carica papaya (L.). Frontiers in Plant Science, 9, 1769. [DOI:10.3389/fpls.2018.01769]
39. Te-chato, S., Susanon, T., Sontikun, Y. (2006). Cultivar, explant type and culture medium influencing embryogenesis and organogenegenesis in Anthurium spp. Songklanakarin. Journal of Science and Technology, 28(4), 717-722.
40. Te-chato, S., Naksombut, S., Boonsiri, J. (2002). Effect of variety and explant on callus formation and micropropagation of Anthurium. Songklanakarin Journal of Science and Technology, 24, 569-578.
41. Teixeira da Silva, J.A., Winarto, B. (2016). Somatic Embryogenesis in Two Orchid Genera (Cymbidium, Dendrobium). Maria Antonietta Germanà, M.A., Lambardi, M. (Eds.), In Vitro Embryogenesis in Higher Plants, Methods in Molecular Biology, Vol. 1359, Springer Science+Business Media, New York. DOI 10.1007/978-1-4939-3061-6_18 [DOI:10.1007/978-1-4939-3061-6_18]
42. Vale, E.M., Reis, R.S., Passamani, L.Z., Santa-Catarina, C., Silveira, V. (2018). Morphological analyses and variation in carbohydrate content during the maturation of somatic embryos of Carica papaya. Physiology and Molecular Biology of Plants, 24, 295-305. [DOI:10.1007/s12298-017-0501-4]
43. Vieira, L.M., Rocha, D.I., Taquetti, M.F., da Silva, L. C., de Campos, J.M.S., Viccini, L.F., Otoni, W.C. (2014). In vitro plant regeneration of Passiflora setacea DC (Passifloraceae): The influence of explant type, growth regulators, and incubation conditions. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 50, 738-745. [DOI:10.1007/s11627-014-9650-0]
44. Wu, J.F., Chen, J.T., Chang, W.C. (2004). Effects of auxins and cytokinins on embryo formation from root-derived callus of Oncidium 'Gower Ramsey'. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 77(1), 107- 109. [DOI:10.1023/B:TICU.0000016492.45075.a3]
45. Zheng, Y.X., Shen, B.N., Chen, C.C., Jan, F.J. (2010). Odontoglossum ring spot virus causing flower crinkle in Phalaenopsis hybrids. European Journal of Plant Pathology, 128, 1-5. [DOI:10.1007/s10658-010-9630-0]
46. Abbaszadeh, S.M., Miri, S.M., Naderi, R. (1396). An Effective Nutrient Media for Asymbiotic Seed Germination and In Vitro Seedling Development of Phalaenopsis 'Bahia Blanca'. Journal of Ornamental Plants, 11-20. (In Persian)
47. Andarz, Z., Daneshvar, M.H., Yari, F. (2014). Induction of callus from three explants of leaf, petiole and stem of viola odorata using growth regulators. 1st National Congress of Ornamental Flowers and Plants. Karaj, Iran. https://civilica.com/doc/331730 (In Persian)
48. Balilashaki, K., Naderi, R., Kalantari, S., Vahedi, M. (2014). PTC&B Efficient in vitro Culture Protocols for Propagating Phalaenopsis 'Cool Breeze', Plant Tissue Culture and Biotechnology 24(2):191-203. [DOI:10.3329/ptcb.v24i2.23552]
49. Chen, Y.C., Chang, C., Chang, W.C. (2000). A reliable protocol for plant regeneration from callus culture of Phalaenopsis. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 36, 290-293. doi:10.1007/s11627-000-0076-5. [DOI:10.1007/s11627-000-0076-5]
50. Chen, J. T., Chang, W. C. (2004). Induction of repetitive embryogenesis from seed-derived protocorms of Phalaenopsis amabilis var. formosa Shimadzu. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 40(3), 290-293. [DOI:10.1079/IVP2003527]
51. Chowdhery, H.J. (2001) Orchid diversity in north-east India. J Orchid Soc India 15: 1-17.
52. Chen, J.T., Chang, W.C. (2006). Direct somatic embryogenesis and plant regeneration from leaf explants of Phalaenopsis amabilis. Biologia Plantarum, 50 (2): 169-173. [DOI:10.1007/s10535-006-0002-8]
53. Chung, H. H., Cheng, J. T., Chang, W. C. (2007). Plant Re-generation through Direct Somatic Embryogenesis from Leaf Explants of Dendrobium. Biologia Plantarum, 51(2), 346-350. doi:10.1007/s10535-007-0069-x [DOI:10.1007/s10535-007-0069-x]
54. David, D., Jualang, A.G. Janna, O.A. (2008). Effect of NAA and BAP on protocorm proliferation of Borneo Scented Orchid, Vanda helvola. Asian Pacific Journal Molecular Biology Biotechnology, 16 (3): 221-224.
55. De, L. C. (2015). Commercial orchids. Berlin: De Gruyter Open. Available at: http://www.degruyter.com/view/product/456245.
56. Dijk, E. (1988) Mykorrhizen der Orchideen. II Die Pilze. Die Orchidee. 39: 116-20
57. Huana, L. V. T., Takamura, T., Tanaka, M. (2004). Callus Formation and Plant Regeneration from Callus through Somatic Embryo Structures in Cymbidium Orchid. Plant Science, 166 (6), 1443-1449. doi:10.1016/j.plantsci.2004.01.023 [DOI:10.1016/j.plantsci.2004.01.023]
58. Kakouei, F., Salehi, H. (2015). Factors affecting in vitro propagation of Dracaena sanderiana Sander ex Mast. cultivars. II. MS salt strengths, subculturing times, rooting and acclimatization. Advances in Horticultural Science 29(4): 165-170
59. Kohsari, A., Chalavi, V., Akbarpour, V. (1399) Effect of explant types and growth regulators on callus induction and secondary metabolites of chicory (Cichorium intybus L.). Journal of Plant Production Research. 27 (2), DOI: 10.22069/jopp.2020.15491.2390 (In Persian)
60. Lee, Y.I., Hsu, S.T., Yeung, E.C. (2013). Orchid protocorm- like bodies are somatic embryos. American Journal of Botany, 100, 2121-2131. doi:10.3732/ajb.1300193 [DOI:10.3732/ajb.1300193]
61. Moradi, S., Daylami, S.D., Arab, M., Vahdati, K. (2017). Direct somatic embryogenesis in Epipactis veratrifolia, a temperate terrestrial orchid. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 92(1), 88-97. [DOI:10.1080/14620316.2016.1228434]
62. Naing, A.H., Chung, J.D., Lim, K.B. (2011). Plant Regeneration through Indirect Somatic Embryogenesis in Coelogyne Cristata Orchid. American Journal of Plant Sciences, 2, 262-267. [DOI:10.4236/ajps.2011.22028]
63. Nazemi Rafi, Z., Salehi, H. (2018). Factors affecting in vitro propagation of some genotypes of himalayan cedar [Cedrus deodara (Roxb. ex Lamb) G. Don.]. Advances in Horticultural Science 32(4):479-486
64. Pathak, P., Verma, S., Prakash, A., Mahant, K.C. (2017). Regeneration competence of an ornamentally important epiphytic orchid, Rhynchostylis gigantean (Lindl.) Ridl. Through leaf segments: a study in vitro. journal of the Orchid Society of India, 31: 97-101
65. Penggow, W., Chen, J.T., Chang, W.C. (2008). Influence of Growth regulators on direct embro formation from leaf explants of Phalaenopsis Orchid. Acta Physiologiae Plantarum, 30, 507-512. [DOI:10.1007/s11738-008-0148-4]
66. Raza, G., Singh, M.B., Bhalla, P.L. (2017). In Vitro Plant Regeneration from Commercial Cultivars of Soybean. BioMed Research International. ID 7379693, [DOI:10.1155/2017/7379693]
67. Roy, J., Banerjee, N. (2003) Induction of Callus and Plant Regeneration from Shoot Tip Explants of Dendrobium Fimbriatum Lindl. var. Oculatum Hk.f. Scientia Horticulturae, 97 (3), 333-340. doi:10.1016/S0304-4238(02)00156-5 [DOI:10.1016/S0304-4238(02)00156-5]
68. Sembi, J.K., Pathak, P., Verma, J. (2020). Regeneration competence of leaf explants in Cymbidium eburneum Lindl. journal of the Orchid Society of India, 34: 17-21.
69. Shylaraj, H.S., Deepthy, R., Korah, P.L. (2007). High frequency mericloning from shake cultures of tropical orchids Dendrobium cv. Sonia. In: Keshavachandran, R., Nazeem, P.A., Girija, D., John, P.S., Peter, K.V. (Ed.). Recent Trends in Horticultural Biotechnology. New Delhi: New India Publishing. p. 327-332.
70. Sidhu S (2010) In vitro micropropagation of medicinal plants by tissue culture. The Plymouth Student. 4(1): 432-446.
71. Singh, M.K., Sherpa, A.R., Hallan, V., Zaidi, A.A. (2007). A potyvirus in Cymbidium spp. In northern India. Australasian Plant Disease Notes. 2(1): 11‐13. [DOI:10.1071/DN07005]
72. Teixeira da Silva, J.A., Winarto, B. (2016). Somatic Embryogenesis in Two Orchid Genera (Cymbidium, Dendrobium). Maria Antonietta Germanà, M.A., Lambardi, M. (eds.), In Vitro Embryogenesis in Higher Plants, Methods in Molecular Biology, vol. 1359, Springer Science+Business Media, New York. DOI 10.1007/978-1-4939-3061-6_18 [DOI:10.1007/978-1-4939-3061-6_18]
73. Wu, J. F., Chen, J. T., Chang, W. C. (2004). Effects of Auxins and Cytokinins on Embryo Formation from Root-Derived Callus of Oncidium 'Gower Ramsey'. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 77(1), 107- 109. doi:10.1023/B:TICU.0000016492.45075.a3 [DOI:10.1023/B:TICU.0000016492.45075.a3]
74. Zheng, Y. X., Shen, B. N., Chen, C. C., Jan, F. J. (2010). Odonto glossum ring spot virus causing flower crinkle in Phalaenopsis hybrids. European Journal of Plant Pathology. 128: 1-5. [DOI:10.1007/s10658-010-9630-0]
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Bidarnamani F, Rahimian Boogar A, Mortazavi S N. Effects of genetic, explant type, plant growth regulator and culture medium on in vitro regeneration of commercial Phalaenopsis orchid cultivars. FOP. 2021; 6 (2) :119-132
URL: http://flowerjournal.ir/article-1-212-fa.html

بیدرنامنی فاطمه، رحیمیان بوگر عبدالرحمن، مرتضوی سید نجم الدین. تاثیر ژنتیک، نوع ریزنمونه، تنظیم کننده‌‌ رشد گیاهی و بستر کشت بر باززایی درون شیشه‌‌ای رقم‌های تجاری ارکیده فالانوپسیس. گل و گیاهان زینتی. 1400; 6 (2) :132-119

URL: http://flowerjournal.ir/article-1-212-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 6، شماره 2 - ( پاییز و زمستان 1400 ) برگشت به فهرست نسخه ها
گل و گیاهان زینتی Flower and Ornamental Plants
Persian site map - English site map - Created in 0.05 seconds with 30 queries by YEKTAWEB 4419