[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما :: ::
:: دوره 5، شماره 1 - ( بهار 1399 ) ::
جلد 5 شماره 1 صفحات 13-18 برگشت به فهرست نسخه ها
انگیزش پینه و اندام‌زایی در شیپوری گلدانی (Zantedeschia spp. cv Orania)
الهه هاشمی دهکردی، سید نجم الدین مرتضوی، پژمان آزادی
پژوهشکده گل و گیاهان زینتی
چکیده:   (599 مشاهده)
logo faشیپوری از گیاهان زینتی تک‌لپه به شمار می‌رود که هم به‌عنوان گیاه گلدانی و هم گل بریدنی در سراسر دنیا مشهور است. در این پژوهش، برای بررسی باززایی غیرمستقیم، از ریزنمونه‌های مختلف شیپوری گلدانی رقم Orania استفاده شد. برای تولید پینه، ریزنمونه‌های جوانه ژوخه، مریستم، و نوک شاخساره های کشت بافتی و برش‌های نازک یاخته‌‌ای ساقه در محیط پایه MS دارای غلظت‌های مختلف BAP و NAA کشت شدند. همچنین اثر کاربرد اسیدآمینه‌ ال-گلوتامین و آدنین‌ سولفات بر میزان باززایی بررسی شد. بیشترین درصد پینه‌زایی (3/73 درصد) از ریزنمونه مریستم در محیط کشت دارای 1 میلیگرم در لیتر BAP به همراه 5/1 میلی‌گرم در لیتر NAA به‌دست آمد. با توجه به کیفیت مناسب پینه به دست آمده از مریستم، این ریزنمونه به محیط کشت MS دارای BAP و آدنین‌سولفات و ال-گلوتامین برای باززایی منتقل شد. بالاترین درصد باززایی (3/78 درصد)، بیشترین میانگین شمار شاخه (4/13 عدد) و میانگین طول شاخه (06/51 میلی‌متر) در تیمار 1 میلیگرم در لیتر BAP به همراه 20 میلیگرم در لیتر آدنین‌سولفات و 300 میلیگرم در لیتر ال-گلوتامین دیده شد. افزودن زغال فعال به میزان 500 میلی‌گرم در لیتر به محیط ریشهزایی دارای 25/0 و 5/0 میلی‌گرم بر لیتر IAA سرعت و کیفیت ریشهزایی را افزایش داد. با توجه به اینکه شیپوری از گیاهان سخت‌کار در زمینه کشت بافت به شمار می‌رود، کاربرد ال-گلوتامین (300 میلی‌گرم در لیتر) و آدنین سولفات (20 میلی‌گرم در لیتر) موجب افزایش کیفیت و شمار گیاهچه‌های  باززایی شده شد. ریشه‌زایی بهینه شیپوری در محیط MS با غلظت 5/0 میلی‌گرم بر لیتر IAA به همراه 500 میلی‌گرم بر لیتر زغال فعال صورت گرفت. گیاهچه‌های با طول مناسب به محیط کشت ریشه‌زایی منتقل شدند و در محیط کشت MS دارای 5/0 میلی‌گرم در لیتر IAA و 500 میلی‌گرم در لیتر زغال فعال بیشترین درصد ریشه‌زایی (3/88 درصد) دیده شد. گیاهچههای ریشه‌دار شده در گلدانهای دارای پرلایت و کوکوپیت به نسبت حجمی مناسب  و در شرایط گلخانه با موفقیت (بیش از 70 درصد) سازگار شدند.
واژه‌های کلیدی: ریزافزایی، شیپوری گلدانی، پینه، گیاه سوخوار
متن کامل [PDF 1687 kb]   (97 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تخصصي
دریافت: 1399/3/8 | پذیرش: 1399/8/16 | انتشار: 1400/2/13
فهرست منابع
1. Ageel, S., Elmeer, P. (2011). Effects of casein hydrolysates and glutamine on callus and somatic embryogenesis of date palm (Phoenix dactylifera). New York Science Journal, 4, 121-12.
2. Azadi, P., Bagheri, H., Molaahmad Nalousi, A., Nazari, F., Chandler, S.F. (2016). Current status and biotechnological advances in genetic engineering of ornamental plants. Biotechnology Advances, 34, 1073-1090. [DOI:10.1016/j.biotechadv.2016.06.006]
3. Azadi, P., Khosh-Khui, M. (2007). Micropropagation of Lilium ledebourii (Baker) Boiss as affected by plant growth regulator, sucrose concentration, harvesting season and cold treatments. Electronic Journal of Biotechnology, 10, 1-10. [DOI:10.2225/vol10-issue4-fulltext-7]
4. Bhuiyan, F.R. (2013). In vitro meristem culture and regeneration of three potato varieties of Bangladesh. Research of. Biotechnolnology, 4, 29-37.
5. Chandra, S., Bandopadhyay, R., Kumar, V., Chandra, R. (2010). Acclimatization of tissue cultured plantlets: From laboratory to land. Biotechnology Letters, 32, 1199-1205. [DOI:10.1007/s10529-010-0290-0]
6. Chang, H.S., Chakrabarty, D., Hahn, E.J., Paek, K.Y. (2003). Micropropagation of calla lily (Zantedeschia albomaculata) via in vitro shoot tip proliferation. In Vitro Cellular and Developmental Biology- Plant, 39, 129-134. [DOI:10.1079/IVP2002362]
7. Dobranszki, J., Teixeira da Silva, J.A. (2010). Micropropagation of apple - A review. Biotechnology Advances, 28(4), 462-488 [DOI:10.1016/j.biotechadv.2010.02.008]
8. El-Shamy, M.A., El-Feky, A.H.M., Eliwa, N.Y.L. (2009). Propagation of calla lily (Zantedeschia aethiopica Spreng) plants by tissue culture technique. Bulletin of Faculty of Agriculture, Cairo University, 60, 99-105.
9. Haque, M., Siddique, A.B., Islam, S.S. (2015). Effect of silver nitrate and amino acids on high frequency plants regeneration in barley (Hordeum vulgare L.). Plant Tissue Culture and Biotechnology, 25, 37-50. [DOI:10.3329/ptcb.v25i1.24124]
10. Hubner, S. (2017). International statistics of flowers and plants (Compilation). International Association of Horticultural Producers (AIPH). www.aiph.org/statistical-yearbook. 65, 2313-7126.
11. Ikeuchi, M., Sugimoto, K., Iwase, A. (2013). Plant callus: mechanisms of induction and repression. The Plant Cell, 25, 3159-3173. [DOI:10.1105/tpc.113.116053]
12. Koech, A.A., Isutsa, D.K., Wu, Q. (2005). Explants, hormones and sucrose influence in vitro shoot regeneration and rooting of calla lily (Zantedeschia albomaculata L. Spreng.) 'Black Magic'. Agriculture Science Technology, 7, 53-66. [DOI:10.4314/jagst.v7i1.31720]
13. Kozak, D., Stelmaszczuk, M. (2009). The effect of benzyladenine on shoot regeneration in vitro of Zantedeschia aethiopica 'Green Goddess'. Annals of UMCS, Horticultura, 19, 14-18. [DOI:10.2478/v10084-009-0003-5]
14. Kulpa, D. (2016). Micropropagation of calla lily (Zantedeschia rehmannii). Folia Horticulturae, 28, 181-186. [DOI:10.1515/fhort-2016-0021]
15. Kumar, V., Rashmi, D., Banerjee, M. (2014). Callus induction and plant regeneration in Solanum tuberosum L. cultivars (Kufri Chipsona 3 and MP-97/644) via leaf explants. International Research Journal of Biological Science, 3, 66-72.
16. Melvin, A.D., Host, R., Antony, S., Ramakrishnan, M., Duraipandiyan, V., Lgnacimuthu, S., Dhabi, N.A. (2018). Effect of L-glutamine and casein hydrolysate in the development of somatic embryos from cotyledonary leaf explants in okra (Abelmoschus esculentus L. Monech). South African Journal of Botany, 114, 223-231. [DOI:10.1016/j.sajb.2017.11.014]
17. Murashige, T., Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue culture. Physiologia Plantrum, 15, 473- 497. [DOI:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x]
18. Nagaraju, V., Howmik, G., Parthasarathy, V.A. (2002). Effect of paclobutrazol and sucrose on in vitro cormel formation in gladiolus. Acta Botanica Croatica, 61, 27-33.
19. Nesi, B., Trinchello, D., Lazzereschi, S., Grassott, A. (2009). Production of lily symptomless virus-free plants by shoot meristem tip culture and in vitro thermotherapy. HortScience, 44, 217-219. [DOI:10.21273/HORTSCI.44.1.217]
20. Pawan, S., Trivedi, R., Purohit, S. (2012). Activated charcoal improves rooting in in vitro derived Acacia leucophloea shoots. International Journal of Plant Developmental Biology, 6, 47-50.
21. Rout, G.R., Mohapatra, A., Mohan Jain, S. (2006). Tissue culture of ornamental pot plants: A critical review on present scenario and future prospects. Biotechnology Advances, 24, 531-560 [DOI:10.1016/j.biotechadv.2006.05.001]
22. Sanchez, J., Daquinta, M., Capote, I., Silva, J.T. (2011). Shoot propagation of Zantedeschia spp. in a temporary immersion system- Effect of culture parameters on plant proliferation and quality. Floriculture and Ornamental Biotechnology, 5, 78-80.
23. Wei, Z., Zhang, H., Wang, Y., Li, Y., Xiong, M., Wang, X., Zhou, D. (2017). Assessing genetic diversity and population differentiation of colored calla lily (Zantedeschia Hybrid) for an efficient breeding program. Genes, 8, 168. [DOI:10.3390/genes8060168]
24. Yip, M.K., Huang, H.E., Ger, M.J., Chiu, S.H., Tsai, Y.C., Lin, C.L., Feng, T.Y. (2007). Production of soft rot resistant calla lily by expressing a ferredoxin-like protein gene (pflp) in transgenic plants. Plant Cell Reports, 26, 449-57. [DOI:10.1007/s00299-006-0246-y]
25. Zhang, X., Wu, Q., Li, X., Zheng, S., Wang, S., Guo, L., Zhang, L., Custers, J. (2011). Haploid plant production in Zantedeschia aethiopica 'Hong Gan' using anther culture. Scientia Horticulturae, 129, 335-342. [DOI:10.1016/j.scienta.2011.03.045]
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Hashemidehkordi E, Mortazavi S N, Azadi P. Callus production and organogenesis in pot calla lily (Zantedeschia spp. cv. Orania). FOP. 2020; 5 (1) :13-18
URL: http://flowerjournal.ir/article-1-167-fa.html

هاشمی دهکردی الهه، مرتضوی سید نجم الدین، آزادی پژمان. انگیزش پینه و اندام‌زایی در شیپوری گلدانی (Zantedeschia spp. cv Orania). گل و گیاهان زینتی. 1399; 5 (1) :13-18

URL: http://flowerjournal.ir/article-1-167-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 5، شماره 1 - ( بهار 1399 ) برگشت به فهرست نسخه ها
گل و گیاهان زینتی Flower and Ornamental Plants
Persian site map - English site map - Created in 0.08 seconds with 30 queries by YEKTAWEB 4341