:: دوره 7، شماره 2 - ( پاییز و زمستان 1401 ) ::
جلد 7 شماره 2 صفحات 276-261 برگشت به فهرست نسخه ها
ارزیابی نوع قلمه برگی، بستر کشت بدون خاک و ریز‌‌نمونه‌های برگ در تولید سانسوریای ابلق در شرایط درون/برون شیشه‌ای
متین دولتی ، مریم عباس آباد ، اسماعیل سیفی ، مهدی علیزاده ، مصطفی خوشحال سرمست*
دانشگاه گرگان
چکیده:   (3530 مشاهده)
افزایش انبوه با حفظ ویژگی‌‌های ژنتیکی، هدف افزایش همگروهی گیاهان زینتی است. از میان گونه‌‌های زینتی، گیاهان بافت ناهمسان برای ظاهر جذاب، همیشه موردتوجه بوده‌‌اند. گیاه برگساره­ای سانسوریا، به دلیل داشتن برگ‌‌های گوشتی و تحمل بیشتر به شرایط نامناسب محیطی، برای نگهداری در شرایط درون خانه بسیار مناسب است. افزایش همگروهی این گیاه با استفاده از نیساگ و پاگیاه صورت می‌‌گیرد. هدف از این پژوهش ارزیابی نوع قلمه برگ و آمیخته خاکی در باززایی گیاه ابلق در شرایط گلخانه و همچنین افزایش درون شیشه‌‌ای گیاهان ابلق سانسوریای پاکوتاه بود. نتایج آزمایش‌‌های انجام‌شده در گلخانه نشان‌دهنده این است که نوع قلمه برگ در انگیزش گیاه بافت ناهمسان بی‌تأثیر است. استفاده از بستر کوکوپیت به همراه پرلایت منجر به تولید تعداد ریشه بیشتر در گیاهان باززایی شده گردید اما با این‌وجود در مقایسه با بستر پرلایت تنها، تأثیری در بهبود شاخه‌‌زایی قلمه برگ سانسوریا نداشت. نتایج نشان‌دهنده این است که ایجاد برش V وارونه در انتهای نزد پاهنگ قلمه برگ تأثیر معنی‌‌داری روی باززایی گیاه از قسمت ابلق نزدِ پاهنگ قلمه برگ ندارد. بررسی‌‌های درون‌‌ شیشه‌‌ای به کمک تنظیم‌کننده رشد توفوردی و کاینتین نشان داد که ریز نمونه‌‌هایی که به مدت 20 روز در محیط دارای 35/0 میلی‌‌گرم در لیتر توفوردی کشت شده و سپس به محیط دارای کاینتین منتقل‌شده‌اند، از میانگین تعداد شاخساره بالاتری برخوردارند. اگرچه که استفاده از ریز‌‌نمونه برگ گرفته‌شده از قسمت سبز-ابلق در انگیزش گیاهان بافت ناهمسان مؤثر نبود با این‌وجود برخی از جهش‌‌های پلاستیدی رخ‌داده منجر به تولید گیاهان زال شد. گیاهان باززایی شده با برگ‌‌های سبز نا­‌‌ابلق با بازده 100% در شرایط گلخانه زیر سیستم مه‌‌پاش سازگار شدند. درمجموع، به دلیل تشکیل مریستم نو از لایه‌‌های داخلی‌‌تر بافت ناهمسان برگ، تشکیل گیاهان بافت ناهمسان شبیه به گیاه مادری در این بررسی درون و برون شیشه‌‌ای میسر نشد.
واژه‌های کلیدی: بافت ناهمسان، پرآوری، سانسوریا، قلمه برگ، 2، 4-D
متن کامل [PDF 933 kb]   (819 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تخصصي
دریافت: 1401/4/6 | پذیرش: 1401/6/4 | انتشار: 1402/3/28
فهرست منابع
1. Blazich, F.A., Novitzky, R.T. (1984). In vitro propagation of Sansevieria trifasciata. HortScience, 19(1), 122-123. [DOI:10.21273/HORTSCI.19.1.122]
2. Donnelly, D.J., Ortiz-Medina, E. (2005). Micropropagation and genetic risk: securing clonal fidelity. Proceedings of The International Workshop On True-To-Typeness of Date Palm Tissue Culure-Derived Plants Morocco.
3. Frank, M.H., Chitwood, D.H. (2016). Plant chimeras: Thegood,thebad,andthe 'Bizzaria'. Developmental Biology, 419, 41-53. [DOI:10.1016/j.ydbio.2016.07.003]
4. Frello, S. Venerus E., Serek, M. (2002). Regeneration of various species of Crassulaceae, with special reference to Kalanchoe. Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 77, 204-208. [DOI:10.1080/14620316.2002.11511480]
5. García Hernández, E., Loera Quezada, M.M., Morán Velázquez, D.C., López, M.G., Chable Vega, M.A, Santillán Fernández, A., Zavaleta Mancera, H.A., Tang, J.Z., Azadi, P., Ibarra Laclette, E., Alatorre Cobos, F. (2022). Indirect organogenesis for high frequency shoot regeneration of two cultivars of Sansevieria trifasciata Prain differing in fiber production. Scientific Report, 12, 8507. [DOI:10.1038/s41598-022-12640-4]
6. Henley, R.W., Chase, A.R., Osborne. L.S. Sansevieria Production Guide.CFREC-A Foliage Plant Note RH-91-30. University of Florida, USA.
7. Ioannou, M., Ioannou, N. (1992). Micropropagation of Kalanchoe Blossfeldiana Poelln., from leaf-blade segments. Miscellaneous Reports Agricultural Research Institute, Ministry of Agriculture and Natural Resources Nicosia, 53, 4.
8. Kakoui, F., Salehi, H. (2011). The effect of different pot mixes on growth and development of Spathiphyllum wallisii. 7th Congress of Iranian Horticultural Science, Esfahan, Iran.
9. Kaur, J., Mudgal, G. (2021). An efficient and quick protocol for in vitro multiplication of snake plant, Sansevieria trifasciata var. Laurentii. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 147, 405-411. https://doi.org/10.1007/s11240-021-02132-0 [DOI:10.1007/s11240-021-02132-0.]
10. Murashige, T., Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologiae Plantarum, 15, 473-497. [DOI:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x]
11. Nazari, F., Farahmand, H., Ghasemi Ghehsareh, M. (2014). The effects of different amounts of natural zeolite on vegetative and reproductive characteristics of Narcissus tazetta L. cv. Shahla. Journal of Plant Production, 37, 39-48.
12. Paek, K.Y., Hahn, E.J. (1999). Variations in African violet 'Crimson Frost' micropropagated by homogenized leaf tissue culture. HortTechnology, 9. https://doi.org/10.21273/HORTTECH.9.4.625 [DOI:10.21273/HORTTECH.9.4.625.]
13. Samiei, L., Khalighi A, Kafi M and Samavat S. (2005). Peat moss substituting with some organic wastes in pothos (Epipremnum aureum 'Golden pothos') growing media. Journal of Horticulture Technology and Science, 6(2), 79 - 88.
14. Sarmast, M.K., Salehi, M., Salehi, H. (2009). The potential of different parts of Sansevieria trifasciata L. leaf for meristemoids production. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 3(3), 2506-2509.
15. Shahzadm, A., Ahmasd, N., Rather, M.A., Husain, M.K., Anis, M. (2009). Improved shoot regeneration system through leaf derived callus and nodule culture of Sansevieria cylindrical. Biologia Plantarum, 53, 745-749. [DOI:10.1007/s10535-009-0136-6]
16. Torres, K.C. (1989). In Vitro Propagation of Snake Plant (Sansevieria). In: Tissue Culture Techniques for Horticultural Crops. Van Nostrand Reinhold. [DOI:10.1007/978-1-4615-9756-8_8]
17. Veltcheva, M.R., Svetleva, D.L. (2005). In vitro regeneration of Phaseolus vulgaris L. via organogenesis from petiole ex-plants. Journal of Central European Agriculture, 6(1), 53-58.
18. Wahyuningsih, T. (2006). Pengaruh beberapa konsentrasi benziladenin (BA) atau kinetin pada pembentukan tunas adventif Sansevieria trifasciata Lorentii in vitro. Skripsi Fakultas Pertanian, Universitas Lampung. pp.26.
19. Wang, Y., Mou, H., Lü, Y., Li, H., Wang, Y., Chen, J. (2017). In vitro Regeneration and Industrial Micropropagation of Haworthia retusa × cooperi cv. 'Variegata'. Chinese Bulletin of Botany, 52, 331-336. [DOI:10.21273/HORTSCI11413-16]
20. Yusnita Pungkastiani, W., Hapsoro, D. (2011). In vitro organogenesis of two Sansevieria cultivars on different concentration of benzyladenine (BA). Agrivita, 147-153.
21. Blazich, F.A., Novitzky, R.T. (1984). In vitro propagation of Sansevieria trifasciata. HortScience, 19(1), 122-123. [DOI:10.21273/HORTSCI.19.1.122]
22. Donnelly, D.J., Ortiz-Medina, E. (2005). Micropropagation and genetic risk: securing clonal fidelity. Proceedings of The International Workshop On True-To-Typeness of Date Palm Tissue Culure-Derived Plants Morocco.
23. Frank, M.H., Chitwood, D.H. (2016). Plant chimeras: Thegood,thebad,andthe 'Bizzaria'. Developmental Biology, 419, 41-53. [DOI:10.1016/j.ydbio.2016.07.003]
24. Frello, S. Venerus E., Serek, M. (2002). Regeneration of various species of Crassulaceae, with special reference to Kalanchoe. Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 77, 204-208. [DOI:10.1080/14620316.2002.11511480]
25. García Hernández, E., Loera Quezada, M.M., Morán Velázquez, D.C., López, M.G., Chable Vega, M.A, Santillán Fernández, A., Zavaleta Mancera, H.A., Tang, J.Z., Azadi, P., Ibarra Laclette, E., Alatorre Cobos, F. (2022). Indirect organogenesis for high frequency shoot regeneration of two cultivars of Sansevieria trifasciata Prain differing in fiber production. Scientific Report, 12, 8507. [DOI:10.1038/s41598-022-12640-4]
26. Henley, R.W., Chase, A.R., Osborne. L.S. Sansevieria Production Guide.CFREC-A Foliage Plant Note RH-91-30. University of Florida, USA.
27. Ioannou, M., Ioannou, N. (1992). Micropropagation of Kalanchoe Blossfeldiana Poelln., from leaf-blade segments. Miscellaneous Reports Agricultural Research Institute, Ministry of Agriculture and Natural Resources Nicosia, 53, 4.
28. Kakoui, F., Salehi, H. (2011). The effect of different pot mixes on growth and development of Spathiphyllum wallisii. 7th Congress of Iranian Horticultural Science, Esfahan, Iran.
29. Kaur, J., Mudgal, G. (2021). An efficient and quick protocol for in vitro multiplication of snake plant, Sansevieria trifasciata var. Laurentii. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 147, 405-411. https://doi.org/10.1007/s11240-021-02132-0 [DOI:10.1007/s11240-021-02132-0.]
30. Murashige, T., Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologiae Plantarum, 15, 473-497. [DOI:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x]
31. Nazari, F., Farahmand, H., Ghasemi Ghehsareh, M. (2014). The effects of different amounts of natural zeolite on vegetative and reproductive characteristics of Narcissus tazetta L. cv. Shahla. Journal of Plant Production, 37, 39-48.
32. Paek, K.Y., Hahn, E.J. (1999). Variations in African violet 'Crimson Frost' micropropagated by homogenized leaf tissue culture. HortTechnology, 9. https://doi.org/10.21273/HORTTECH.9.4.625 [DOI:10.21273/HORTTECH.9.4.625.]
33. Samiei, L., Khalighi A, Kafi M and Samavat S. (2005). Peat moss substituting with some organic wastes in pothos (Epipremnum aureum 'Golden pothos') growing media. Journal of Horticulture Technology and Science, 6(2), 79 - 88.
34. Sarmast, M.K., Salehi, M., Salehi, H. (2009). The potential of different parts of Sansevieria trifasciata L. leaf for meristemoids production. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 3(3), 2506-2509.
35. Shahzadm, A., Ahmasd, N., Rather, M.A., Husain, M.K., Anis, M. (2009). Improved shoot regeneration system through leaf derived callus and nodule culture of Sansevieria cylindrical. Biologia Plantarum, 53, 745-749. [DOI:10.1007/s10535-009-0136-6]
36. Torres, K.C. (1989). In Vitro Propagation of Snake Plant (Sansevieria). In: Tissue Culture Techniques for Horticultural Crops. Van Nostrand Reinhold. [DOI:10.1007/978-1-4615-9756-8_8]
37. Veltcheva, M.R., Svetleva, D.L. (2005). In vitro regeneration of Phaseolus vulgaris L. via organogenesis from petiole ex-plants. Journal of Central European Agriculture, 6(1), 53-58.
38. Wahyuningsih, T. (2006). Pengaruh beberapa konsentrasi benziladenin (BA) atau kinetin pada pembentukan tunas adventif Sansevieria trifasciata Lorentii in vitro. Skripsi Fakultas Pertanian, Universitas Lampung. pp.26.
39. Wang, Y., Mou, H., Lü, Y., Li, H., Wang, Y., Chen, J. (2017). In vitro Regeneration and Industrial Micropropagation of Haworthia retusa × cooperi cv. 'Variegata'. Chinese Bulletin of Botany, 52, 331-336. [DOI:10.21273/HORTSCI11413-16]
40. Yusnita Pungkastiani, W., Hapsoro, D. (2011). In vitro organogenesis of two Sansevieria cultivars on different concentration of benzyladenine (BA). Agrivita, 147-153.



XML   English Abstract   Print



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 7، شماره 2 - ( پاییز و زمستان 1401 ) برگشت به فهرست نسخه ها